DETEKSI STAPHYLOCOCCUS AUREUS PENYEBAB MASTITIS

i

DETEKSI Staphylococcus aureus PENYEBAB MASTITIS SUBKLINIS PADA SAPI PERAH DI KECAMATAN CENDANA KABUPATEN ENREKANG

SKRIPSI

OLEH:

DZUL HAERAH O 111 10 272

PROGRAM STUDI KEDOKTERAN HEWAN FAKULTAS KEDOKTERAN UNIVERSITAS HASANUDDIN MAKASSAR 2015

ii

DETEKSI Staphylococcus aureus PENYEBAB MASTITIS SUBKLINIS PADA SAPI PERAH DI KECAMATAN CENDANA KABUPATEN ENREKANG

DZUL HAERAH O 111 10 272

SKRIPSI sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Kedokteran Hewan Pada Program Studi Kedokteran Hewan Fakultas Kedokteran

PROGRAM STUDI KEDOKTERAN HEWAN FAKULTAS KEDOKTERAN UNIVERSITAS HASANUDDIN MAKASSAR 2015

iii

iv

PERNYATAAN KEASLIAN

1. Yang bertanda tangan dibawah ini : Nama

: Dzul Haerah

NIM

: O111 10 272

Menyatakan dengan sebenarnya bahwa : a. Karya skripsi saya adalah asli b. Apabila sebagian atau seluruhnya dari skripsi ini, terutama dalam bab hasil dan pembahasan, tidak asli atau plagiasi, maka saya bersedia dibatalkan dan dikenakan sanksi akademik yang berlaku. 2. Demikian pernyataan keaslian ini dibuat untuk dapat digunakan seperlunya.

Makassar, 18 Agustus 2015

DZUL HAERAH

v

“Mari kita katakan pada orang-orang bahwa buku terbaik masih harus ditulis, lukisan terbaik masih harus diciptakan, dan pemerintahan terbaik masih harus dibentuk. Dan, segala yang terbaik masih harus dilakukan oleh kita semua.” (Sulaiman Al Kumayi)

“Let your passion be a purpose, because one day it will be your profession” (Dedy Corbuzier)

vi

ABSTRAK DZUL HAERAH.O11110272. Deteksi Staphylococcus aureus Penyebab Mastitis Subklinis Pada Sapi Perah di Kecamatan Cendana Kabupaten Enrekang. Dibimbing oleh Lucia Muslimin dan Fika Yuliza Purba.

Mastitis subklinis merupakan salah satu penyebab penurunan produksi dan kualitas susu sehingga keberadaan mastitis subklinis pada usaha peternakan sapi perah menjadi hal yang sangat merugikan. Berbagai spesies bakteri dapat menjadi penyebab mastitis subklinis, salah satunya Staphylococcus aureus. Penelitian ini bertujuan untuk mendeteksi keberadaan Staphylococcus aureus pada susu mastitis subklinis pada sapi perah di Kecamatan Cendana Kabupaten Enrekang. Kuartir ambing dari 28 ekor sapi perah diuji mastitis dengan metode California Mastitis Test (CMT) dan ditemukan 22 ekor sapi perah yang menunjukkan positif mastitis subklinis. Kuartir yang positif mastitis subklinis diperah dan diambil susunya kemudian dilakukan isolasi pada media Baird Parker Agar (BPA) dan uji identifikasi berupa uji katalase, pewarnaan gram, koagulase, penanaman pada media Mannitol Salt Agar (MSA) untuk membedakan antara Staphylococcus aureus dengan bakteri Staphylococcus lainnya dan kultur pada media Blood Agar Plate (BAP) untuk melihat kemampuan hemolisis S.aureus. Hasil penelitian didapatkan 4 ekor sapi perah yang mastitis subklinis disebabkan Staphylococcus aureus.

Kata Kunci: Sapi perah, Mastitis subklinis, Staphylococcus aureus Cendana,

vii

ABSTRACT DZUL HAERAH.O11110272. Detection Of Staphylococcus aureus Which Causes Subclinical Mastitis In Dairy Cattle At Kecamatan Cendana Kabupaten Enrekang. Supervised by Lucia Muslimin dan Fika Yuliza Purba.

Subclinical mastitis was one of causes of decreasing in production and quality of milk. The presence of subclinical mastitis in dairy farm that impacted econemical loss of farmers. The various species of bacteria could be the causes of subclinical mastitis, including Staphylococcus aureus. This research was aim to detect Staphylococcus aureus in subclinical mastitis milk in dairy cows from Kecamatan Cendana Kabupaten Enrekang. Kuartir of udder from twebty eight (28) dairy cows and got twenty two (22) dairy cows were positive subclincal mastitis. Kuartir were Subclinical mastitis then milked and taken their milk then isolated on Baird Parker Agar (BPA) and identify test such as catalase test, staining Gram, koagulase test, planting on Mannitol Salt Agar (MSA) to distinguish Staphylococcus aureus from other Staphylococcus and culture on Blood Agar (BA) to see the ability of hemolysis Staphylococcus aureus. The result from research obtained four (4) dairy cows were subclinical mastitis caused by Staphylococcus aureus.

Keywords : Dairy Cows, Subclinical mastitis, Staphylococcus aureus, Cendana.

viii

KATA PENGANTAR

Alhamdulillah, Puji dan Syukur senantiasa penulis panjatkan kepada Allah Subhana Wa Ta‟ala ata berkat dan rahmat-Nya sehingga penelitian dan penyusunan skripsi dapat terselesaikan. Salam dan Shalawat tak lupa tercurah kepada Nabiyullah Muhammad Shalallahu „Alaihi Wa Sallam beserta para Sahabat, Tabi‟in, Tabiuttabi‟in dan orang-orang yang senantiasa mengikuti ajaran Beliau. Penulisan ini merupakan hasil penelitian yang dilakukan oleh peneliti dan dimaksudkan untuk memenuhi salah satu syarat meraih gelar Sarjana Kedokteran Hewan, Universitas Hasanuddin Makassar. Penelitian ini berjudul “Deteksi Staphylococcus aureus Penyebab Mastitis Subklinis Pada Sapi Perah di Kecamatan Cendana Kabupaten Enrekang”. Penulis berharap apa yang disajikan dalam penulisan ini dapat memberi manfaat kepada pembaca. Penulis juga mengucapkan permohonan maaf jika ada kekurangan serta berharap adanya masukan berupa kritik dan saran yang membangun demi kesempurnaan penulisan ini. Penulis menyadari bahwa dalam penyusunan tulisan ini banyak kendala yang dihadapi dan atas bantuan banyak pihak sehingga penulisan ini dapat terselesaikan. Oleh karena itu penulis ingin menyampaikan terima kasih kepada: 



 

 

Orang tua yang senantiasa mendoakan kesuksesanku, menasehatiku, penyemangat dan teman diskusi yang baik, ayahanda Abd. Halim, S.H, M.H serta ibunda tercinta yang telah berada di tempat terindah di sisi-Nya, St. Hajerah,S.H (Almarhumah). Prof. Dr. drh. Lucia Muslimin, M.Sc selaku ketua prodi Kedokteran Hewan Universitas Hasanuddin yang juga menjadi Pembimbing Akademik dan Pembimbing I penulis. drh. Fika Yuliza Purba, M.Sc selaku pembimbing II penelitian yang dengan teliti dan sabarnya membimbing penulis. Prof. Dr.drh. Ratmawati Malaka, M.Sc, drh. A. Maghfirah Satya Apada, Dr. Fatmawati Maruddin, S.Pt, M.P dan Dr.drh. Dwi Kesuma Sari selaku pembahas dan penguji yang telah memberikan masukan demi kesempurnaan penulisan. Para Staf dan pengajar Prodi Kedokteran Hewan Fakultas Kedokteran Universitas Hasanuddin. drh. Junwar Anwar selaku kepala dinas Peternakan dan Perikanan Kabupaten Enrekang yang telah member izin penelitian dan para staf Dinas Peternakan dan Perikanan Kabupaten Enrekang.

ix

 



  







 

drh. Suhartila, bapak Ridwan, bapak Sanusi serta para peternak di Desa Pinang dan Desa Lebang yang telah membantu saat berada di lapangan. Tante dan Om yang selalu memberikan dukungannya, tante Hasnah Tajuddin, S.Pd dan om Rasyid Diri, S.Pd, Mama talma dan keluarga, Om sanusi dan keluarga. Saudara-saudaraku yang tercinta dan terhebat, kak Rusmaini Rasyid, S.KM, kak Adriana Halim, S.Farm, Apt, kak Husnul Hidayah Halim, S.Pd, Muh. Dirman Rasyid dan Muh. Arham Halim. Serta keponakan tersayang, Siti Nur Aisyah Althafunnisa dan Zhafran Fariz Azzamy. Teman seperjuanganku mulai dari proposal hingga penyusunan hasil, Sri Rahayu. Teman-teman Chebee, Ayu, Yhuyhu, Lilis, Taa Dhar, Mela, yang selalu bersama susah maupun senang. Kawan terbaikku, teman diskusi, berbagi cerita, pemberi nasehat dan semangat, Vilzah Fatimah, Khaerunnisa Muhammad dan Nur Asmayanti. Pak Markus Lembong yang senantiasa memberikan bimbingannya saat di Laboratorium dan teman-teman yang menemani dan membantu selama di Laboratorium Senior-senior yang banyak membantu hingga penyusunan hasil, dr. Sherizena Poetri M, drh. Astrya, drh. Tri Budi Setiawan dan Firmansyah, S.Pd, M.Pd. Ryan Payung, Zainal, Fatmasari, Sitti Mughniati, Christine Aditya, Lidia Nugraha serta semua teman-teman Kedokteran Hewan 2010,V_Gen, baik yang ada di pojok kiri, pojok kanan, geng belakang, geng depan, yang selalu saling memberikan semangat. Farid Nahrir, Syamsinar Rahman, Ija Mustika Sari serta teman-teman D’blist lainnya. Semua pihak yang telah membantu penulis.

Penulis

x

DAFTAR ISI HALAMAN JUDUL HALAMAN PENGESAHAN PERNYATAAN KEASLIAN ABSTRAK ABSTRACT KATA PENGANTAR DAFTAR ISI DAFTAR TABEL DAFTAR GAMBAR DAFTAR LAMPIRAN

i iii iv vi vii viii x xii xii xii

1 PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang 1.2 Rumusan Masalah 1.3 Tujuan Penelitian 1.4 Manfaat Penelitian 1.5 Ruang Lingkup Penelitian 1.6 Keaslian Penelitian 1.7 Hipotesis Penelitian

1 2 2 2 2 3 3

2 TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Ambing 2.2 Mastitis 2.2.1 Etiologi 2.2.2 Spesimen Rentan 2.2.3 Penularan dan Faktor Predisposisi 2.2.4 Patogenesis 2.2.5 Gejala Klinis 2.2.6 Diagnosis Mastitis 2.2.7 Pengendalian dan Pencegahan 2.2.8 Pengobatan 2.3 Staphylococcus aureus

4 5 7 8 8 8 9 9 10 10 11

2.4 Mastitis oleh Staphylococcus aureus

13

3 METODOLOGI PENELITIAN 3.1 Lokasi dan Waktu 3.2 Materi Penelitian 3.2.1 Sampel dan Teknik Sampling 3.2.1 Penentuan Mastitis 3.2.3 Bahan 3.2.3 Alat

14 14 14 14 15 15

xi

3.3 Metode Penelitian 3.3.1 Uji Mastitis dengan CMT 3.3.2 Pengambilan Susu 3.3.3 Pengujian Laboratorium 3.3.4 Alur Penelitian 3.3.5 Analisa Data 4 HASIL DAN PEMBAHASAN 4.1 Pemeriksaan Mastitis Subklinis di Kecamatan Cendana 4.2 Pengujian Total Plate Count (TPC) 4.3 Deteksi Keberadaan Staphylococcus aureus 4.4 Mastitis Subklinis oleh Staphylococcus aureus 5 SIMPULAN DAN SARAN 5.1 Simpulan 5.2 Saran DAFTAR PUSTAKA LAMPIRAN RIWAYAT HIDUP

15 15 15 16 18 18 19 20 24 27 29 29 30 35

xii

DAFTAR TABEL 1. 2. 3. 4. 5.

Pengaruh jumlah sel somatik terhadap penurunan produksi susu Pengaruh jumlah sel somatik terhadap kualitas susu Hubungan nilai CMT dengan jumlah sel somatik Distribusi jumlah sampel di Kecamatan Cendana Hasil uji jumlah Total Bakteri/ Total Plate Count (TPC)

6 6 10 20 20

DAFTAR GAMBAR 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14.

Skema anatomi ambing Mastitis klinis Morfologi Staphylococcus aureus Staphylococcus pada Mannitol Salt Agar (MSA) Katalase positif Uji mastitis dengan metode California Mastitis Test (CMT) Hasil pemeriksaan mastitis subklinis Hasil isolasi bakteri pada Nutrient Agar (NA) Hasil isolasi bakteri pada Baird Parker Agar (BPA) Hasil uji katalase dan pewarnaan Gram Hasil uji koagulase Hasil kultur pada Mannitol Salt Agar (MSA) Hasil kultur pada Blood Agar Plate (BAP) Kondisi perkandangan di Kecamatan Cendana DAFTAR LAMPIRAN

1. 2. 3.

Uji mastitis subklinis dan deteksi Staphylococcus aureus Prosedur Kerja Dokumentasi penelitian

4 7 11 12 12 15 19 24 24 25 25 26 27 28

1

I. PENDAHULUAN

I.1. Latar Belakang Indonesia merupakan negara yang memiliki sumber daya alam berlimpah, dengan kondisi geografis yang sangat mendukung untuk pertumbuhan hewan ternak seperti sapi perah. Luas lahan pertanian yang dapat dimanfaatkan untuk tanaman rumput seluas 18.820 juta Ha (Mulyani dan Las, 2008). Lahan seluas itu dapat mencukupi kebutuhan pakan untuk sapi perah. Produksi yang mencirikan sapi perah yaitu susu. Susu merupakan bahan pangan yang sempurna dan mempunyai nilai gizi tinggi karena mempunyai kandungan nutrisi yang lengkap antara lain lemak, protein, laktosa, vitamin, mineral, dan enzim, pH mendekati netral dan kandungan airnya tinggi, oleh karena itu susu sangat mudah mengalami kerusakan akibat pencemaran mikroba (Frank, 2001 dalam Handayani dan Maya. 2010). Kebutuhan susu sebagai sumber protein hewani cenderung mengalami peningkatan dari tahun ke tahun, disebabkan kesadaran masyarakat akan pentingnya penyediaan gizi yang baik semakin meningkat. Penyediaan susu yang berkualitas memiliki arti yang penting di Indonesia (Rombaut, 2005). Kabupaten Enrekang merupakan satu daerah yang telah menjadi prioritas pengembangan peternakan sapi perah di Sulawesi Selatan. Dukungan dari Dinas Peternakan dan Perikanan Kabupaten Enrekang tampak dengan adanya programprogram pemberian modal bagi peternak dan Inseminasi Buatan (IB) yang bertujuan mengembangkan produksi susu (Kasim dkk., 2011). Awalnya usaha peternakan sapi perah dipusatkan di Kecamatan Cendana dan saat ini 44,8% dari total populasi sapi perah di Kabupaten Enrekang telah tersebar di luar Kecamatan Cendana (Dinas Peternakan dan Perikanan Kabupaten Enrekang, 2011). Salah satu faktor penghambat dalam peningkatan produksi susu dan merupakan masalah umum dalam usaha peternakan sapi perah adalah penyakit. Penyakit yang sering menyerang sapi perah saat memproduksi susu atau laktasi ialah radang ambing (Hidayat dkk., 2002). Penyakit radang ambing atau yang dikenal dengan mastitis merupakan kasus yang sering dijumpai pada sapi perah dan dapat disebabkan oleh bermacam-macam penyebab (Blood dan Henderson, 2007). Mastitis merupakan infeksi yang dapat bersifat akut maupun subakut. Munculnya radang ini ditandai oleh kenaikan sel somatik di dalam air susu, perubahan fisik maupun susunan air susu dan disertai atau tanpa disertai perubahan patologis pada kelenjar ambing. Mastitis pada sapi perah merupakan salah satu penyakit yang sangat merugikan karena banyak sapi yang diculling, menurunkan kualitas dan produksi susu. Penurunan produksi susu bisa mencapai 15% hingga 30% per-sapi per-laktasi, sehingga menjadi permasalahan besar dalam industri sapi perah (Subronto, 2003). Mastitis dapat dibedakan menjadi dua yaitu mastitis klinis dan subklinis. Kejadian mastitis subklinis dapat mencapai 90% dan disertai penurunan produksi susu hingga 30% (Taylor dan Field, 2004), sedangkan 2-3% merupakan kasus mastitis klinis. Mastitis klinis dapat dilihat secara kasat mata, seperti susu yang abnormal dengan adanya lendir dan penggumpalan susu, puting terasa panas, bengkak dan sensitif saat dilakukan pemerahan. Mastitis subklinis merupakan

2

kasus yang paling banyak dan sering terjadi pada peternakan sapi perah dan paling banyak menimbulkan kerugian karena tidak menunjukkan gejala apapun pada sapi. Kejadian mastitis subklinis yang tidak segera ditangani akan berlanjut menjadi mastitis klinis (Sudarwanto, 1999). Staphylococcus aureus dan Streptococcus agalactiae merupakan 2 bakteri utama penyebab mastitis pada sapi perah (Purnomo dkk., 2006). Beberapa hasil penelitian diketahui bahwa S. aureus dan S.agalactiae yang mempunyai hemaglutinin sehingga kemampuan adesi pada sel epitel ambing jauh lebih besar daripada yang tidak mempunyai hemaglutinin (Abrar, 2009). Mastitis yang disebabkan oleh S.aureus dapat terjadi secara klinis namun seringkali terjadi secara subklinis dan menahun (Bannerman dan Wall, 2005). Deteksi keberadaan Staphylococcus aureus sebagai penyebab mastitis merupakan hal yang penting karena menjadi faktor utama dalam penangan kasus mastitis (Purnomo dkk., 2006). I.2. Rumusan Masalah Berdasarkan latar belakang yang tersebut di atas, maka rumusan masalah pada penelitian ini yaitu apakah terdapat Staphylococcus aureus penyebab mastitis subklinis. I.3. Tujuan Penelitian 1.3.1. Tujuan Umum Tujuan umum penelitian ini untuk mendeteksi Staphylococcus aureus sebagai penyebab mastitis subklinis di Kecamatan Cendana Kabupaten Enrekang. 1.3.2. Tujuan Khusus Tujuan khusus pada penelitian ini untuk mengidentifikasi Staphylococcus aureus sebagai penyebab penyakit mastitis subklinis pada sapi perah di Kecamatan Cendana Kabupaten Enrekang. 1.4. Manfaat Penelitian 1.4.1. Manfaat pengembangan ilmu Penelitian ini diharapkan dapat memberikan informasi mengenai kejadian mastitis yang disebabkan oleh Staphylococcus aureus sehingga dapat dijadikan bahan pertimbangan dalam penanganan dan pencegahan mastitis bagi peternak dan Dinas peternakan khususnya di Kabupaten Enrekang. 1.4.2. Manfaat aplikasi Penelitian ini diharapkan dapat memberikan pengetahuan tambahan pada peternak mengenai bakteri penyebab mastitis. 1.5. Ruang Lingkup Penelitian Ruang lingkup penelitian ini yaitu susu berasal dari kuartir ambing sapi betina laktasi yang berada di Desa A dan Desa B di Kecamatan Cendana.

3

1.6. Keaslian Penelitian Penelitian mengenai Deteksi Staphylococcus aureus penyebab Mastitis Subklinis di Kecamatan Cendana Kabupaten Enrekang belum pernah dilakukan. Penelitian mengenai Staphylococcus aureus penyebab mastitis pernah dilakukan namun tujuan dan daerah yang berbeda. Seperti, Tirnata (2010) meneliti tentang “Identifikasi Staphylococcus aureus penyebab mastitis dengan uji fermentasi mannitol dan deteksi produksi asetoin pada sapi perah di wilayah kerja koperasi usaha tani ternak Suka Makmur Grati Pasuruan” 1.7. Hipotesis Terdapat bakteri Staphylococcus aureus pada susu sapi perah yang diduga terkena mastitis subklinis.

4

2. TINJAUAN PUSTAKA

2.1. Ambing Ambing adalah suatu kelenjar kulit yang tertutup oleh bulu, kecuali pada putingnya yang tampak sebagai kantung yang berbentuk persegi empat (Prihadi, 1997). Ambing pada sapi terletak di daerah inguinal dan terdiri dari empat kuartir yang terpisah. Dua kuartir bagian depan biasanya berukuran 20% lebih kecil dari kuartir bagian belakang dan kuartir-kuartir itu bebas satu sama lain. Sapi perah yang produksi susunya tinggi memiliki ambing yang besar, putingnya terletak pada keempat sudut, pembuluh venanya menonjol (Blakely dan Bade, 1991). Ambing memiliki beberapa sistem yang mendukung dalam strukturnya, antara lain terdapat sistem peredaran darah, limfe, saraf, dan sistem saluran yang berperan dalam penyimpanan dan sekresi susu (Foley dkk., 1972). Parenkima (jaringan epitel) dari ambing dalam beberapa hal mirip dengan jaringan paru-paru, terdiri dari alveoli dan duktus. Alveoli merupakan struktur utama untuk produksi susu. Berbagai duktus bergabung menjadi satu yang akhirnya membentuk satu duktus yang besar yang disebut duktus lactiferosa. Duktus lactiferosa dibagi menjadi 4 bagian rongga yang besar yaitu pars glandularis dan bagian yang lebih kecil di dalam puting disebut pars papillaris (Frandson, 1992)

Gambar 2. 1. Skema Anatomi Ambing (Anonim, 2011a) Pars glandularis merupakan rongga yang terdapat di atas dasar puting akan berhubungan dengan pars papilaris. Batas antara pars glandularis dan pars papillaris sering kali ditandai dengan pematangan sirkuler yang berisi vena dan serabut otot polos. Pars papilaris berhubungan dengan bagian luar puting melewati bukaan tersempit pada ujung puting yang disebut streak kanal, yang terbuka pada ostium papilae. Lumen duktus papilaris pada sapi senantiasa dipenuhi lipatan-lipatan epitelial, dan terdapat sfingter jaringan otot polos di bagian ujung puting (Wiley dan Sons, 2009).

5

Streak kanal pada ujung puting dikelilingi oleh sfringter yang tersusun dari serabut-serabut otot polos sirkuler. Sfingter pada sapi yang sulit diperah sangat ketat sehingga jika diperbaiki dengan tindakan bedah dapat menimbulkan mastitis mengikuti operasi ambing atau puting tersebut. Aparatus suspensorius ambing terdiri dari ligamen suspensorius medial dan ligamen suspensorius lateral. Ligamen suspensorius medial mengandung banyak saringan elastis kuning sebab jaringan tersebut berasal dari tunika abdominal yang merupakan modifikasi dari facia (jaringan pengikat) yang menutupi permukaan superfisial otot oblik abdominal eksterna. Ligamen suspensorius medial ini turun antara dua bagian ambing dan menutupi sisi medial dari masing-masing bagian ambing. Dua lapisan ligamen tersebut dapat dipisahkan dengan mudah karena keduanya hanya diikat dengan sejumlah kecil jaringan pengikat areolar yang longgar. Hampir tidak ada pembuluh darah atau saraf melewati ligamen medial dari sebagian ambing ke sebagian ambing lainnya (Frandson, 1992). Suplai darah ke ambing sebagian besar melalui arteri pudenda (pudik) eksterna yang merupakan cabang dari pudendoepigastrik. Arteri pudenda eksterna bergerak ke arah bawah melalui kanalis inguinalis yang berliku-liku dan terbagi menjadi cabang-cabang kranial dan kaudal yang mensuplai bagian depan dan belakang kuartir ambing pada sisi yang sama dari arteri tersebut. Aliran vena dari ambing kebanyakan melalui lingkaran vena pada dasar ambing yang melekat pada dinding abdominal. Lingkaran vena dibentuk dari vena-vena utama yang mengairi ambing. Vena pudenda eksterna menerima aliran darah dari setiap kuartir kranial dan kaudal. Vena pudenda eksterna pada bagian kranial bermuara ke dalam vena epigastrik superfisialis kaudalis, dan pada bagian kaudal akan bermuara ke dalam vena perineal (Wiley dan Sons, 2009). Nodula limfa ambing dan nodula limfa lainnya yang tersebar di seluruh tubuh penting untuk pertahanan sapi terhadap penyakit. Nodula limfa membentuk limfosit yaitu sejenis sel darah putih yang berperan pada imunitas. Nodula juga menghilangkan bakteri dan benda asing lainnya. Respon terhadap infeksi mastitis, nodula meningkatkan hasil limfositnya ke dalam pembuluh limfe yang akhirnya menyebarkan limfosit ke dalam vena cava anterior. Limfosit kemudian dibawa ke ambing untuk memerangi infeksi (Frandson, 1992). 2.2. Mastitis Mastitis adalah suatu peradangan pada internal ambing (Sudarwanto, 2009). Istilah mastitis berasal dari kata ”mastos” yang artinya kelenjar ambing dan ”itis” untuk inflamasi (Swartz, 2006). Penyakit ini dapat terjadi pada semua jenis mamalia dan dapat disebabkan oleh berbagai jenis bakteri, fungi, alga atau mikoplasma (Anri, 2008). Proses mastitis hampir selalu dimulai dengan masuknya mikroorganisme ke dalam kelenjar susu melalui lubang puting (sfingter puting). Sfingter puting berfungsi melindungi dari infeksi kuman. Ambing pada dasarnya sudah dilengkapi perangkat pertahanan sehingga susu tetap steril. Perangkat pertahanan tersebut antara lain perangkat pertahanan mekanis, seluler dan perangkat pertahanan yang tidak tersifat (non spesifik) (Sudarwanto, 2009). Terjadinya mastitis menyebabkan kenaikan sel somatik di dalam susu (Subronto, 2003). Winata (2011) menyatakan bahwa sel somatik merupakan kumpulan sel yang terdiri dari sel epitel, sel neutrofil, eosinofil, limfosit, eritrosit,

6

sel plasma dan kolostrum korpuskel. Keberadaan sel somatik dalam susu dapat dijadikan indikator dalam penilaian kuantitas dan kualitas susu (Tabel 1 dan 2). Secara umum, di dalam susu yang normal mengandung sebanyak 0-200,000 sel/ml. Sel-sel tersebut terdiri dari sel mononuklear besar (65-70%), neutrofil (08%), limfosit (5%), dan kadang-kadang juga monosit. Apabila jumlah sel di dalam air susu melebihi 300,000 sel/ml diduga ambing tersebut mengalami radang karena jumlah sel mencerminkan beratnya proses radang pada ambing (Subronto, 2003). Pemeriksaan secara mikroskopik terhadap susu yang berasal dari ambing yang terkena mastitis menunjukkan peningkatan jumlah sel somatik yang dapat mencapai 5,000,000 sel/ml (Foley dkk., 1972). Tabel 1. Pengaruh jumlah sel somatik terhadap penurunan produksi susu Jumlah sel somatik/ml Penurunan produski susu 3 6 5x10 – 1x10 10% 1x106 – 5x106 24,6 % >5x106 37, 5% (Lukman dkk., 2009) Tabel 2. Pengaruh jumlah sel somatik terhadap kualitas susu Jumlah sel somatik/ml Kualitas < 1,25x105 Baik sekali 1,25x105 – 2,5x105 Baik 2,5x105 – 3,75x105 Cukup 3,75x105 – 5x105 Kurang >5x105 Jelek (Sudarwanto dkk., 1984) Mastitis berdasarkan gejalanya dibedakan menjadi dua bentuk yaitu mastitis klinis dan subklinis (Subronto, 2003). Mastitis klinis ditandai dengan gejala panas, sakit, merah, pembengkakan dan penurunan fungsi pada ambing. Mastitis subklinis terjadi tanpa disertai gejala klinis baik pada susu maupun ambingnya (Sudarwanto, 1999). Umumnya mastitis subklinis akan berlanjut menjadi mastitis kronis yang kadang-kadang didahului oleh munculnya mastitis akut maupun subakut yang dapat menimbulkan terbentuknya jaringan ikat pada ambing (Holtenius dkk., 2003). Mastitis subklinis dianggap lebih berbahaya karena tidak menimbulkan gejala dan dapat menimbulkan kerugian yang sangat tinggi. Mastitis subklinis menyebabkan penurunan produksi susu mencapai 15%. Kerugian lain disebabkan peningkatan biaya produksi untuk pengobatan, terkadang sapi yang terkena mastitis subklinis juga harus dikeluarkan dari peternakan lebih awal karena biaya pemeliharaan yang lebih tinggi dari produksinya. Kerugian ekonomis karena mastitis subklinis dapat mencapai Rp 10,000,000/ekor/tahun (Rahayu, 2009).

7

Gambar 2.2. Gejala klinis berupa kebengkakan dan kemerahan pada ambing akibat mastitis (Anonim, 2009) Mastitis subklinis di Indonesia dapat mencapai 97% dari keseluruhan kejadian mastitis. Mastitis subklinis merupakan penyakit kompleks yang dapat disebabkan oleh bakteri, virus, khamir dan kapang (Subronto, 2003). Proses terjadinya mastitis senantiasa dikaitkan dengan tiga faktor yakni ternak, penyebab peradangan (80-90% disebabkan oleh mikroorganisme) dan lingkungan (Sudarwanto, 1999). Resiko untuk menderita mastitis senantiasa terletak pada keseimbangan ketiga faktor tersebut. Sapi mudah terkena mastitis bila kondisi sapi menurun akibat cekaman lingkungan yang berdampak pada penurunan daya tahan tubuh sapi (Kleinschroth dkk., 1994 dalam Sudarwanto, 1999). Kesulitan dalam memberantas mastitis dikarenakan lingkungan peternakan yang kurang bersih dan susu merupakan sarana pertumbuhan yang baik bagi berbagai mikroba. Pencegahan terhadap penyakit terutama mastitis harus benar-benar mendapat perhatian khusus. Sekitar 70 % dari sapi perah yang dipelihara di Indonesia menderita mastitis dan dapat menurunkan produksi susu sekitar 15-20 %. Status kesehatan ambing pada sapi perah menjadi penting dalam menunjang produksi dan kualitas susu saat berproduksi, oleh karena itu selama laktasi, kesehatan dan kebersihan sapi perah harus selalu dijaga dengan baik (Siregar, 1990). Walaupun tidak secara drastis, infeksi oleh agen penyebab mastitis dapat merusak perkembangan jaringan sekretoris susu yang menyebabkan penurunan produksi dan kualitas susu (Harmon, 1994) karena menurunkan kemampuan sintesa laktosa, kasein, lemak dan protein, di lain pihak serum albumin dan pH susu akan mengalami peningkatan (Jones, 2009). 2.2.1. Etiologi Penyebab mastitis sangat kompleks dan beragam, baik yang bersifat infeksi maupun non infeksi. Mastitis yang bersifat infeksi disebabkan oleh bakteri yang terdapat dalam lingkungan dimana bakteri tersebut dapat menginfeksi kelenjar susu. Berbagai jenis bakteri telah diketahui sebagai agen penyebab mastitis diantaranya E.coli, Enterobacter aerogenes, Pseudomonas aeroginosa, beberapa bakteri strain Streptococcus dan Staphylococcus dan dalam keadaan tertentu dijumpai pula Mycoplasma sp., Nocardia asteroids dan Candida sp. (Anonim, 2012). Staphylococcus aureus dan Streptococcus agalactiae merupakan dua bakteri utama penyebab mastitis subklinis pada sapi perah di Indonesia (Wahyuni dkk., 2005). Bakteri ini dikenal sebagai bakteri komensal yang dapat diisolasi dari sebagian besar permukaan tubuh (Abrar dan Mahdi, 2009). Hasil penelitian isolasi dan identifikasi karakteristik S. aureus diperoleh 32 sampel susu sapi perah yang berasal dari Kaliurang, Bantul, Boyolali, dan Baturaden Jawa Tengah secara klinis sehat ternyata mengandung S. aureus penyebab utama mastitis pada sapi perah (Salasia dkk., 2005).

8

Menurut Foley dkk. (1972) peradangan pada ambing tidak hanya disebabkan oleh bakteri tetapi dapat juga disebabkan oleh pengaruh bahan kimia, panas dan luka mekanik yang menyebabkan kenaikan jumlah sel somatik pada susu dan jaringan ambing. 2.2.2. Spesimen Rentan Mastitis dapat menyerang semua hewan mamalia seperti sapi, kambing, domba, anjing, kucing dan lain-lain dan menjadi penyakit yang paling merugikan pada industri peternakan sapi atau kambing perah. Dilaporkan oleh Rahayu (2009) kerugian ekonomi akibat mastitis subklinis dapat mencapai Rp 10,000,000/ekor/tahun. 2.2.3. Penularan dan Faktor predisposisi Selain faktor mikroorganisme, faktor hewan dan lingkungan juga menentukan mudah atau tidaknya terjadi mastitis dalam suatu peternakan (Subronto, 2003). Faktor predisposisi dari hewan meliputi kondisi dan bentuk ambing serta umur ternak. Ambing yang menggantung sangat rendah ataupun ambing yang lubang putingnya terlalu besar dan juga jika adanya luka atau lecet pada ambing memudahkan mikroorganisme masuk. Umur hewan juga menjadi faktor yang mempermudah terjadinya mastitis, semakin tua ternak semakin peka terhadap mastitis karena mekanisme penutupan lubang puting susu semakin menurun serta penyembuhan semakin lambat (Hidayat dkk., 2002). Faktor lingkungan dan pengelolaan peternakan yang banyak mempengaruhi terjadinya mastitis meliputi kandang dan ternak yang basah dan kotor, urutan pemerahan yang salah, peralatan pemerahan yang kotor, pemerah atau pekerja yang memiliki tangan dan pakaian kotor dan kuku tajam (FAO, 2008). Jarak antar sapi yang terlalu dekat atau populasi yang padat juga akan mempermudah terjadinya penularan mastitis (Hidayat dkk. 2002). Pakan yang mengandung estrogen, misalnya bangsa clover, jagung ataupun konsentrat dapat mempermudah terjadinya radang (Subronto, 2003). 2.2.4. Patogenesis Mastitis sebagian besar disebabkan oleh masuknya bakteri patogen melalui lubang puting ke dalam ambing dan berkembang di dalamnya sehingga menimbulkan reaksi radang. Hurley dan Morin (2000) menjelaskan bahwa peradangan pada ambing diawali dengan masuknya bakteri ke dalam ambing yang dilanjutkan dengan multiplikasi. Respon pertama jika adanya invasi dari mikroorganisme yaitu pembuluh darah ambing mengalami vasodilatasi dan terjadi peningkatan aliran darah pada ambing. Permeabilitas pembuluh darah meningkat disertai dengan pembentukan produk-produk inflamasi seperti prostaglandin, leukotrine, protease dan metabolit oksigen toksik yang dapat meningkatkan permeabilitas kapiler ambing. Adanya fitrasi cairan ke jaringan menyebabkan kebengkakan pada ambing sehingga terjadi apadesis, sel-sel fagosit yaitu netrofil polimorfonukleus (PMN) dan makrofag keluar dari pembuluh darah menuju jaringan yang terinfeksi dilanjutkan fagositosis dan penghancuran bakteri. Terdapat berbagai faktor yang mempengaruhi mudahnya kelenjar ambing terkena infeksi diantaranya adalah jaringan yang menjadi kurang efektif pada umur tua, PMN yang terlalu muda pada kelenjar dan adanya PMN yang tidak memusnahkan bakteri tetapi melindungi bakteri dari proses penghancuran berikutnya. Faktor lain juga karena adanya komponen lipid pada susu yang kemungkinan

9

menghambat reseptor Fc pada leukosit, menyebabkan degranulasi yang berlebihan dan meningkatnya gejala peradangan. Lemak dan kasein susu yang tertelan oleh PMN dapat menyebabkan kegagalan PMN dalam proses ingesti bakteri. Kemampuan PMN dan fagosit membunuh bakteri juga dapat menurun pada keadaan defisiensi vitamin E atau selenium (Hurley dan Morin, 2000 ;Lestari, 2006) . Pemusnahan bakteri melalui oxygenrespiratory burst membutuhkan oksigen yang lebih banyak, namun kadar oksigen pada susu jauh lebih rendah daripada konsentrasi oksigen dalam darah. Demikian juga glukosa sebagai sumber energi pada susu sangat rendah konsentrasinya, padahal untuk fagositosis diperlukan energi yang lebih tinggi (Lestari, 2006) 2.2.5. Gejala Klinis Gejala mastitis klinis yang akut dapat dilihat atau diraba oleh panca indera meliputi ternak lesu, tidak mau makan, terdapat tanda-tanda adanya peradangan pada ambing (bengkak, panas, kemerahan, nyeri bila diraba dan perubahan fungsi) serta perubahan pada susu (susu memancar tidak normal, bening, kental, menggumpal, warna berubah menjadi kuning, kecoklatan, kehijauan, kemerahan atau ada bercak-bercak merah). Gejala mastitis klinis yang kronis terlihat ternak tampak sehat, ambing teraba keras, mengeriput dan puting peot. Mastitis subklinis merupakan peradangan pada ambing tanpa ditemukan gejala klinis pada ambing dan air susu. Ternak terlihat sehat, nafsu makan biasa dan suhu tubuh normal. Tetapi melalui pemeriksaan lebih lanjut akan didapatkan jumlah sel somatik meningkat, ditemukan kuman-kuman penyebab penyakit, susu menjadi pecah, butiran-butiran halus atau gumpalan (Hidayat, 2008) 2.2.6. Diagnosis Mastitis Mastitis klinis dapat didiagnosa dengan melihat adanya peradangan pada ambing dan puting serta adanya perubahan warna dari susu yang dihasilkan. Deteksi mastitis subklinis dilakukan melalui perhitungan jumlah sel somatik dalam susu. Sel somatik dapat dihitung dengan menggunakan metode Breed yaitu dengan menghitung secara langsung jumlah sel somatik. Secara tidak langsung sel somatik dapat dihitung berdasarkan pada intensitas reaksi, metode yang sering dipakai antara lain Aulendorfer Mastitis Probe (AMP), California Mastitis Test (CMT), Milk Quality Test (MQT), Michinghan Mastitis Test (MMT), Whitside Test (WTS) (Foley, 1972). Kelebihan pengujian secara tidak langsung adalah hasil lebih cepat diperoleh dengan tenaga dan waktu yang lebih sedikit. Pengujian secara tidak langsung sangat baik untuk pemeriksaan contoh susu dalam jumlah besar dan pemeriksaan teratur di lapangan (Sukada, 1996). Kelemahannya adalah jumlah sel somatik yang didapatkan hanyalah dugaan dan dapat dikatakan sebagai diagnosa pendahuluan (Sudarwanto, 1982). Pemeriksaan secara tidak langsung pada susu sapi yang diduga terinfeksi mastitis dapat diukur berdasarkan pada tingkat kekentalan bahan pereaksi setelah dicampur dengan susu. Tingkat kekentalan dipengaruhi oleh jumlah sel somatik yang terkandung dalam susu dan menunjukkan tingkat keparahan infeksi pada ambing (Foley dkk., 1972; Setiawan dkk., 2012). California Mastitis Test (CMT) merupakan metode secara tidak langsung yang paling sering dilakukan untuk mendeteksi adanya kejadian mastitis subklinis. CMT merupakan metode pengujian kejadian mastitis subklinis

10

dengan menggunakan suatu reagen khusus sebelum dilakukan isolasi dan identifikasi bakteri penyebab di laboratorium. Spesimen yang diperlukan adalah susu yang diperah dari kuartir yang dicurigai dengan memberikan kode dari setiap kuartir (Anonim, 2012). Tabel 3. Hubungan nilai CMT dengan jumlah sel somatik Nilai CMT Jumlah Sel Somatik Interpretasi Normal 0 - 200.000 Sehat Trace 200.000 - 400.000 Sangat ringan Positif 1(+) 400.000 - 1.200.000 Ringan Positif 2(++) 1.200.000 - 5.000.000 Sedang Positif 3 (+++) Lebih dari 5.000.000 Berat (McFadden, 2011) 2.2.7. Pengendalian dan Pencegahan Pengendalian penyakit ini dapat dilakukan dengan mencegah terjadinya infeksi terutama yang ditimbulkan oleh kesalahan manajemen dan higienitas pemerahan yang tidak standar. Pemeriksaan secara rutin perlu dilakukan untuk mengetahui kemungkinan adanya mastitis subklinis sebagai langkah awal agar tidak menjadi lebih parah (Anonim, 2012). Kebersihan kandang sapi dan manajemen peternakan yang baik merupakan upaya pencegahan yang efektif untuk mencegah mastitis. Tingkat kemiringan kandang juga merupakan hal yang perlu diperhatikan. Tingkat kemiringan 2% menghindari genangan air terutama urin yang banyak membawa bibit penyakit. Jarak antara sapi juga perlu diperhatikan, hal ini dikarenakan semakin pendek jarak antara sapi maka penularan akan semakin besar. Pedet yang menyusui langsung dari puting induk juga merupakan faktor penular mastits yang harus diperhatikan. Pedet ini dapat menularkan penyakit mastitis dari induk yang terinfeksi ke induk yang sehat, pedet yang mulutnya kotor juga dapat menyebabkan infeksi pada puting sapi sehingga dapat menyebabkan mastitis (Subronto, 2003). Proses pemerahan juga harus diperhatikan, baik peralatan maupun pemerah sendiri. Setelah selesai pemerahan juga harus diingat bahwa sapi harus segera didipping. Dipping merupakan proses pencucian puting sapi perah oleh larutan tertentu yang dilakukan setelah pemerahan, hal ini penting dilakukan dalam rangka untuk mengendalikan penyakit mastitis (Anonim, 2011). Kebiasan dipping dan memberikan pakan setelah sapi selesai diperah juga dapat mengurangi insiden terjadinya mastitis karena sapi tidak langsung berbaring sehingga lubang putingnya yang sedang terbuka lebar setelah pemerahan tidak dimasuki oleh mikroorganisme yang dapat menyebabkan mastitis (Subronto, 2003). 2.2.8. Pengobatan Terapi antibiotik untuk mastitis didasarkan pada penyebab dari penyakit (Anonim, 2012), namun terapi seperti ini memakan waktu yang lama. Glukokortikoid dan Oksitetrasiklin dapat membantu pada kasus mastitis yang disebabkan oleh koliform. Isoflupredone juga telah dilaporkan dapat mengurangi pembengkakan pada ambing namun obat ini tidak terdistribusi dengan baik pada ambing tetapi pada beberapa kasus tidak ada pengobatan yang

11

efisien sehingga sebaiknya sapi dipotong (Anonim, 2010). Biasanya pengobatan mastitis dilakukan dengan antibiotik secara intramammae, tetapi karena kontrol terhadap pemakaian antibiotik ini sulit dilakukan dan juga tidak sesuai dengan keamanan konsumen terhadap produk susu maka pemakaian antibiotik dihindarkan (Nurdin dan Mihrani, 2004). 2.3. Staphylococcus aureus Berdasarkan taksonominya, Staphylococcus aureus dapat digolongkan sebagai berikut: Kingdom : Bacteria Filum : Firmicutes Kelas : Cocci Ordo : Bacillales Family : Staphylococccaceae Genus : Staphylococcus Spesies : Staphylococcus aureus (Todar, 2005) Staphylococcus aureus merupakan bakteri Gram positif berbentuk kokus, berdiameter 1μm dan tersusun atas kelompok-kelompok yang tak beraturan, tidak membentuk spora,dan dapat lisis oleh obat-obatan seperti penisilin dapat bertahan hidup tanpa oksigen (Jawelz dkk., 2001). Bakteri ini dapat tumbuh pada suhu optimum 37oC tetapi membentuk pigmen paling baik pada suhu kamar (20-25oC) (Tolan, 2008).

Gambar 2.3. Morfologi Staphylococcus aureus yang bergerombol menyerupai buah anggur (Anonim, 2011b) Koloni Staphylococcus aureus pada perbenihan padat berwarna abu-abu sampai kuning keemasan, berbentuk bundar, halus, menonjol, dan berkilau, menghasilkan toksin yang bersifat tahan panas (Kusuma, 2009). Yuswari (2006) mengatakan bahwa S. aureus merupakan flora normal pada manusia dan hewan terutama ditemukan pada saluran pernafasan bagian atas, kulit, dan mukosa. Bakteri ini bersifat anaerob fakultatif, katalase positif, koagulase positif dan menghasilkan asam laktat. Staphylococcus aureus pada biakan Mannitol Salt Agar (MSA) membentuk koloni berwarna kuning keemasan (Gambar 2.4).

12

Gambar 2.4. S.aureus pada Mannitol Salt Agar (Anonim, 2013) Staphylococcus aureus tahan pengeringan dan panas, tetap hidup pada suhu 50oC selama 30 menit dan dapat hidup pada debu kering dan makanan yang didinginkan sampai membeku. Staphylococcus aureus dapat menimbulkan penyakit melalui kemampuannya menyebar luas dalam jaringan dan melalui pembentukan enzim, dan toksin. Beberapa toksin dan enzim yang dihasilkan oleh S.aureus antara lain katalase, koagulase, hialuronidase dan leukosidin (Wannet dkk., 2005). Katalase merupakan suatu enzim yang dihasilkan oleh S. aureus yang dapat mengubah hidrogen peroksida (H2O2) menjadi air (H2O) dan oksigen (O2). Tes katalase dapat membedakan antara Stapylococcus dengan Streptococcus yang menunjukkan hasil positif untuk Staphylococcus yang ditandai dengan terbentuknya gelembung gas (Wannet dkk., 2005). Gambar 2.5 memperlihatkan hasil reaksi positif pada uji H2O2.

Gambar 2.5. Katalase positif oleh S.aureus (Anonim, 2011c) Koagulase merupakan suatu enzim yang dapat menggumpalkan plasma. Adanya enzim koagulase menjadi sifat khas S.aureus yang digunakan untuk membedakannya dengan Staphylococcus yang lain (Levinson dan Jawetz, 2003; Bello dan Qahtani, 2005; Wannet dkk., 2005). Enzim lain yang dihasilkan yaitu hialuronidase yang mempermudah penyebaran bakteri dalam menginvasi suatu penyakit sehingga disebut faktor penyebar. Selain itu juga, dihasilkan stafilokinase yang mengakibatkan fibrinosis, tetapi kerjanya lebih lambat daripada streptokinase, proteinase, dan β laktamase. Leukosidin merupakan suatu toksin yang dapat mematikan sel-sel darah putih apabila toksin tersebut masuk ke dalam jaringan (Carter dan Wise, 2004). Selain enzim dan toksin, S. aureus juga menghasilkan enterotoksin. Enterotoksin adalah protein dengan berat molekul 3,5x104 dalton, tahan panas, tidak rusak walau direbus sampai mendidih selama 30 menit dan tahan terhadap enzim-enzim pencernaan. Suhu optimal untuk pembentukan enterotoksin adalah 35-37oC (Wannet, 2005). Menurut Wahyuni dkk. (2005) bahwa Staphylococcus aureus memiliki hemaglutinin yang mempengaruhi kemampuan adesi pada sel epitel ambing dan diduga menjadi faktor virulen yang penting.

13

Hemaglutinin merupakan salah satu komponen bakteri yang membantu perlekatan sel bakteri pada sel darah merah. Hubungan antara sifat hemaglutinin dan kemampuan bakteri untuk melekat pada sel inang telah diteliti pada berbagai spesies bakteri. Keberadaan hemaglutinin pada S. aureus diduga akan mempermudah bakteri ini untuk melakukan adesi pada sel ambing (Abrar dkk., 2013). 2.4. Mastitis oleh Staphylococcus aureus Bagian tubuh sapi yang paling digemari oleh Staphylococcus aureus adalah ambing. Bakteri yang berada di ambing akan menjalar ke kulit, rambut, puting, dan menyebabkan lesi pada puting yang kemudian akan menyebabkan mastitis. Mastitis yang disebabkan oleh S. aureus merupakan bentuk mastitis terpenting pada peternakan sapi perah karena mikroorganisme ini terdapat dimana-mana seperti kulit sapi, lingkungan, pemerah, peralatan yang digunakan, air dan udara. Bakteri ini merupakan penyebab paling utama pada kasus mastitis subklinis di beberapa negara tapi kadang juga ditemukan pada kasus klinik. Penularan dipercepat dengan pencemaran tangan pemerah, mesin, alat pemerah, lap, ember dan sebagainya. Apabila dalam pemeriksaan kulit dapat diisolasi kuman S.aureus, terdapat kemungkinan kandang tersebut ada sapi yang menderita mastitis oleh S.aureus (Subronto, 2003). Infeksi S.aureus semakin sulit ditangani dengan antibiotik karena bakteri ini banyak yang resisten terhadap berbagai jenis antibiotik. Selain itu, pemakaian antibiotik akan menimbulkan masalah baru yaitu adanya residu antibiotik di dalam susu atau pengolahannya. Berbeda dengan mikrokoki, S.aureus mampu menghasilkan enzim koagulase dan toksin hemolisin alfa dan beta yang menyebabkan kerusakan jaringan dan air susu yang bersifat lebih berat. Patogenitas kuman S.aureus juga didasarkan atas tingkat produksi enzim dan toksin hemolisin tersebut. Keberadaan hemaglutinin yang tinggi pada isolat S. aureus asal sapi mastitis subklinis dipercaya sebagai salah satu faktor virulensi, yakni hemaglutinin ini bertanggung jawab terhadap adesi secara spesifik bakteri pada sel-sel epitel ambing. Hemaglutinin pada jenis bakteri lain telah diketahui sebagai salah satu faktor yang bertanggung jawab terhadap sifat adesivitas bakteri pada permukaan sel inang. Kasus mastitis subklinis yang disebabkan oleh S. aureus jalannya infeksi ini biasanya melalui mukosa kelenjar ambing. Patogenesis infeksi bakteri ini pada kejadian mastitis subklinis belum diketahui secara sempurna. Diduga infeksi dimulai oleh keberhasilan bakteri menembus lapisan mukosa, lalu dilanjutkan oleh proses adesi dan kolonisasi. Tampaknya kemampuan adesi dan kolonisasi bakteri pada sel epitel merupakan tahap penting untuk keberhasilan infeksi (Abrar dkk., 2013). Deteksi untuk mengetahui S. aureus sebagai penyebab mastitis merupakan faktor utama sebagai salah satu langkah dalam penanganan kasus mastitis, dimana cara yang dilakukan sebagian besar masih bergantung atas dasar kriteria fenotip (Boerlin dkk., 2003) antara lain meliputi morfologi pertumbuhan koloni, uji katalase untuk membedakan dari Streptococcus, adanya produksi enzim koagulase serta adanya fermentasi manitol pada Mannitol Salt Agar (MSA) (Cappucino dan Sherman, 2005).

14

3. MATERI DAN METODE

3.1. Lokasi dan Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan pada bulan November 2014 hingga Januari 2015. Susu sapi perah berasal dari Desa A dan Desa B di Kecamatan Cendana Kabupaten Enrekang dan dilakukan deteksi Staphylococcus aureus di Laboratorium Mikrobiologi Fakultas Kedokteran Universitas Hasanuddin. 3.2. Materi Penelitian 3.2.1. Sampel dan teknik sampling Sapi perah yang digunakan dalam penelitian ini sebanyak 28 ekor sapi yang diperoleh berdasarkan rumus deteksi keberadaan penyakit (Martin dkk., 1986) n= [1-(1-a) 1/D] [N-(D-1)/2] Dimana, n= Besaran sampel a= Tingkat kepercayaan (Konfidensi) D= Asumsi Prevalensi N= Jumlah populasi dengan tingkat konfidensi 95% , asumsi prevalensi 10% (Sugiri dan Anri, 2010) dan populasi 557 ekor (Dinas Peternakan dan Perikanan Kabupaten Enrekang, 2014), maka: n = [1 – (1- a)1/D] [N – (D – 1)/2] n = [1 – (1- 0,95)1/56] [557 – (56 – 1)/2] n = [1 – 0,948] [557 – 28] n = 0,052 x 529 n = 28 Kuartir ambing sapi perah tersebut akan diuji CMT lalu kemudian susu yang berasal dari ambing yang menunjukkan positif mastitis subklinis akan diambil yang selanjutnya akan diuji di laboratorium. Sampel diambil dari dua desa yang berada di Kecamatan Cendana yaitu Desa A dan Desa B. Pemilihan desa tersebut dikarenakan kedua desa memiliki populasi sapi perah terbanyak di Kecamatan Cendana. 3.2.2. Penentuan Mastitis Mastitis subklinis ditentukan dengan melakukan pengujian CMT. Hasil positif berdasarkan sistem skoring pada pengujian CMT (Anonim, 2011). Sapi perah yang didiagnosa mastitis subklinis yaitu sapi yang minimal 1 kuartir ambingnya menunjukkan hasil positif terhadap CMT. Penentuan hasil positif mastitis subklinis dilakukan berdasarkan tingkat kekentalan saat penambahan reagen CMT ke susu. Nilai pengujian CMT terdiri dari trace, positif 1 (+), positif 2 (++) dan positif 3 (+++)

15

Gambar 3.1. Pengujian mastitis subklinis dengan pengujian CMT (A) trace, (B) lemah, (C) sedang dan (D) kuat (McFadden, 2011)

Tingkat kekentalan ditentukan dari jumlah sel somatik yang terkandung dalam susu. Trace menunjukkan terjadinya sedikit endapan, positif 1 (+) endapan terlihat jelas, positif 2 (++) campuran langsung mengental dan endapan bergerak ke tengah paddle dan positif 3 (+++) banyak terbentuk endapan dan menyebabkan permukaan menjadi cembung (Setiawan, 2013). 3.2.3. Bahan Bahan yang digunakan dalam penelitian ini yaitu Baird Parker Agar (BPA), Nutrient Agar (NA), alkohol, pereaksi pewarnaan Gram, pereaksi katalase, Mannitol Salt Agar (MSA), reagen CMT, plasma darah, aquades. 3.2.4. Alat Alat yang digunakan dalam penelitian ini berupa paddle test, test tube, container, ice pack, cawan petri, tabung reaksi, mikroskop, objek glass, cover glass, botol media, pipet ukur, ose, bunsen, inkubator, stomacher, autoclave, label, korek api, spidol permanent, alat tulis. 3.3. Metode 3.3.1. Uji Mastitis dengan CMT Susu diambil dari hasil pemerahan setiap kuartir sapi perah yang dilakukan pada sore hari. Pengujian keberadaan mastitis subklinis dilakukan dengan mengambil 2 ml susu yang ditempatkan di paddle test lalu direaksikan dengan reagen CMT sebanyak 2 ml, kemudian campuran tersebut dihomogenkan membentuk lingkaran selama 10-15 detik. Pembacaan hasil reaksi dilakukan sekitar 20 detik di tempat yang terang. Reaksi ini ditandai dengan ada tidaknya perubahan pada kekentalan susu. Hasil pengujian ditentukan berdasarkan skoring CMT yaitu trace, positif 1, positif 2 dan positif 3. Sampel yang tidak menunjukkan terjadinya pengendapan atau terjadi tapi sangat tipis (trace) maka sapi dinyatakan tidak mengalami mastitis subklinis. 3.3.2. Pengambilan susu Susu yang digunakan untuk pengujian di laboratorium yaitu susu yang berasal dari kuartir sapi yang menunjukkan positif CMT. Susu diambil sebanyak ± 20 ml dan langsung ditampung dalam tabung reaksi tertutup yang steril dan telah diberi label, kemudian disimpan dalam termos berisi es, agar

16

suhunya stabil pada 5-10oC untuk menghindari perkembangbiakan bakteri hingga tiba di laboratorium. 3.3.3. Pengujian Laboratorium 3.3.3.1. Isolasi Bakteri Isolasi dilakukan dengan penanaman bakteri pada media Baird Parker Agar (BPA) dan Nutrient Agar (NA). Secara aseptis dilakukan pengenceran dimulai 100,101,dst. Pengenceran 10-3 dan 10-4 akan ditanam di Nutrient Agar (NA) dan pengenceran 10-2 dan 10-3 akan ditanam pada Baird Parker Agar (BPA). Masing-masing pengenceran 10-2, 10-3 dan 10-4 dimasukkan dalam cawan lalu media Nutrient Agar (NA) dan Baird Parker Agar (BPA) dituangkan dan dihomogenkan dengan menggoyangkan seperti angka 8. Cawan diinkubasi selama 24-48 jam pada suhu 37oC . Koloni yang tumbuh pada media NA digunakan untuk menghitung Total Plate Count (TPC). Koloni S.aureus pada BPA mempunyai ciri koloni bundar, licin/halus, cembung, diameter 2-3 mm, warna abu-abu hingga kehitaman, sekeliling tepi koloni bening (berbentuk halo). Koloni mempunyai konsistensi berlemak dan lengket bila diambil denga jarum inokulasi. (BSN, 2011). 3.3.3.2. Identifikasi Bakteri Uji katalase dilakukan untuk membedakan Staphylocccus dan Streptococcus. Inokulum dari Baird Parker Agar (BPA) diambi menggunakan ose dan dimasukkan ke dalam tabung yang berisi H2O2 untuk melihat pembentukan gelembung-gelembung gas (BSN, 2011). Identifikasi Pewarnaan Gram. Kaca objek dibersihkan dengan alkohol hingga bebas lemak, kemudian NaCl fisiologis diteteskan di atas kaca objek dan koloni diletakkan pada kaca objek lalu disebarkan setipis mungkin dan difiksasi di atas bunsen. Preparat yang telah difiksasi lalu ditetesi dengan Kristal Violet dan didiamkan selama 1-2 menit. Sisa zat warna dibuang kemudian dibilas dengan air mengalir. Preparat ditetesi dengan larutan lugol dan dibiarkan selama 30 detik. Larutan lugol dibuang dan dibilas dengan air mengalir. Preparat dilunturkan dengan alkohol 96% sampai semua zat warna luntur, dan segera dicuci dengan air mengalir. Zat warna Fuchsin diteteskan pada kaca objek dan didiamkan selama 2 menit lalu dibilas dengan air mengalir kemudian dibiarkan kering. Pengamatan dilakukan dengan pembesaran objektif 100x memakai minyak emersi. S.aureus memiliki ciri Gram positif, berwarna ungu dan bergerombol menyerupai buah anggur (BSN, 2011). Uji fermentasi manitol pada media Mannitol Salt Agar (MSA) dilakukan dengan mengambil 1 ose inokulum dari Baird Parker Agar (BPA), kemudian dikultur pada media Manitol Salt Agar (MSA) dengan cara distreak dan diinkubasi selama 24 jam pada suhu 37oC. Kondisi asam dihasilkan jika terjadi perubahan warna media dari merah muda menjadi kuning, ini menunjukkan adanya Staphylococcus aureus (Anonim, 2013).

17

Uji koagulasi dilakukan mengambil NaCl fisiologis dan diletakkan di atas kaca objek kemudian diambil 1 ose inokulum dari Baird Parker Agar (BPA) dan mencampurnya dengan NaCl yang telah ada di objek glass kemudian plasma darah diteteskkan pada campuran NaCl dan inokulum, terjadinya penggumpalan plasma menunjukkan adanya Staphylococcus aureus (Anonim, 2013). Pengujian terhadap patogenitas dari S.aureus dilakukan pada Blood Agar Plate (BAP) dengan mengambil 1 ose inokulum yang berasal dari Mannitol Salt Agar (MSA) kemudian ditanam pada media Blood Agar Plate (BAP) dengan menggunakan metode gores kemudian inkubasi selama 18-24 jam. Patogenitas S.aureus ditandai dengan kemampuan melisiskan sel darah merah, dapat dilihat dengan adanya zona bening di sekitar koloni pada media Blood Agar (BSN, 2011)

18

3.3.4. Alur Penelitian Sapi Perah

Uji CMT Postif

Negatif

Pengambilan dan pengumpulan susu

Baird Parker Agar (BPA)

Isolasi

Nutrient Agar (NA) Total Plate Count (TPC)

Identifikasi Pewarnaan Gram

Uji Katalase

Gram (+), coccus, bergerombol

Negatif

Positif

Uji Koagulase

Negatif

Positif Kultur pada Mannitol Salt Agar (MSA)

Memfermentasi Mannitol

Tidak memfermentasi mannitol

Kultur pada media Blood Agar Plate (BAP)

Analisis Data

Kesimpulan

3.3.5. Analisis Data Kejadian mastitis akibat Staphylococcus aureus pada sapi perah di Kecamatan Cendana Kabupaten Enrekang dikonfirmasi melalui identifikasi bakteri pada susu melalui pengujian laboratorium dan dianalisis secara deskriptif.

19

4

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1. Pemeriksaan mastitis subklinis di Kecamatan Cendana Sampel yang digunakan sebanyak 28 ekor sapi yang berada di Kecamatan Cendana yang tersebar di Desa A dan Desa B. Pemilihan lokasi pengambilan sampel dikarenakan kedua desa memiliki populasi sapi perah terbanyak di Kecamatan Cendana. Sapi perah yang digunakan merupakan sapi betina produktif. Penelitian diawali dengan wawancara kepada peternak mengenai kejadian penurunan produksi susu sapi perah serta melakukan pengamatan pada sapi dan kemudian dari hasil wawancara dipilih sapi perah yang mengalami penurunan produksi susu. Sapi kemudian dilakukan pemeriksaan mastitis menggunakan metode California Mastitis Test (CMT). Keuntungan menggunakan CMT karena reagen tersebut mengandung arylsulfonate yang apabila bereaksi dengan sel somatik dalam susu akan membentuk gelatin. Tingkat kekentalan reaksi tersebut menunjukkan jumlah sel somatik dalam susu, semakin banyak sel somatik yang ada dalam susu maka semakin cepat membentuk gelatin. Pemeriksaan diawali dengan membersihkan kandang dan ambing sapi kemudian tangan pemerah dibersihkan dengan alkohol agar tidak terjadi kontaminasi bakteri yang berasal dari tangan pemerah. Susu dari setiap kuartir ambing sapi ditampung pada paddle test sebanyak 2 ml lalu dicampurkan dengan reagen CMT dengan volume yang sama lalu dihomogenkan dan dilakukan pengamatan dan penilaian terhadap tingkat kekentalan reaksi yang terjadi (Gambar 4.1)

2

3

1

3

4

A B Gambar 4.1. Hasil Pemeriksaan mastitis dengan metode (CMT). (A) Angka 2 dan 3 menunjukkan hasil positif CMT dan 1 dan 4 menunjukkan hasil negatif. (B) Perbesaran dari angka 3 pada gambar A. Tampak gumpalan pada dasar paddle (ditunjukkan oleh tanda panah) Pemeriksaan CMT hanya dilakukan pada 108 kuartir, ini dikarenakan saat pengamatan terhadap sapi ditemukan 4 kuartir mengalami atrofi dan tidak lagi mensekresikan susu. Hasil pemeriksaan diperoleh 33 kuartir positif mastitis subklinis. Kejadian mastitis subklinis didiagnosa pada 22 dari 28 sapi perah (78,5%) yang diperiksa (Tabel. 4).

20

Tabel 4. Distribusi jumlah sampel di Kecamatan Cendana Desa ∑ sampel ∑ kuartir yang diuji ∑ kuartir positif ∑ mastitis (ekor) CMT CMT subklinis (ekor) A 11 46 10 7 B 17 66 23 15 28 112 33 22 4.2. Pengujian Jumlah Total Bakteri/Total Plate Count (TPC) Uji laboratorium diawali dengan pengujian Total Plate Count (TPC) yang dilakukan terhadap 33 susu yang berasal dari kuartir sapi yang mastitis subklinis dan 2 susu yang berasal dari kuartir sapi yang sehat. Pengujian meliputi pengujian Jumlah Total Bakteri/Total Plate Count (TPC) terhadap ambang Batas Maksimum Cemaran Mikroba (BMCM) pada susu yang telah ditetapkan oleh SNI yaitu 1x106 cfu/ml (Tabel 5). Tabel 5. Hasil Uji Jumlah Total Bakteri/ Total Plate Count (TPC) No Sampel 1

Sp 1

2

Sp 2

3

Sp 3

4

Sp 4

5

Sp 5

6

Sp 6

Uji CMT Kuartir Skoring A Negatif B Negatif C Negatif D Negatif A Negatif B Negatif C Negatif D Negatif A Positif 3 B Positif 2 C Positif 2 D Atrofi A Negatif B Negatif C Negatif D Negatif A Negatif B Positif 2 C Negatif D Negatif A Negatif B Negatif C Negatif D Positif 2

Kode tabung tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil S1 S2 S3 tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil S34 S4 Tidak diambil Tidak diambil tidak diambil S35 tidak diambil S5

TPC

Standar

9,6 x 105 2,4 x 105 1,0 x 106 1,0x106

2,0 x 104 3,2 x 105

3,2 x 104 4,5 x 105

Ket

21

No

Sampel

7

Sp 7

8

9

10

11

12

Sp 8

Sp 9

Sp 10

Sp 11

Sp 12

13

Sp 13

14

Sp 14

15

Sp 15

Uji CMT Kuartir Skoring A Negatif B Negatif C Positif 2 D Atrofi A Negatif B Negatif C Positif 2 D Negatif A Negatif B Positif 1 C Negatif D Negatif A Negatif B Positif 2 C Positif 2 D Negatif A Negatif B Positif 2 C Negatif D Negatif A Negatif B Negatif C Negatif D Positif 2 A Negatif B Negatif C Negatif D Negatif A Negatif B Negatif C Positif 3 D Negatif A Negatif B Positif 2 C Negatif D Negatif

Kode tabung tidak diambil tidak diambil S6 tidak diambil tidak diambil tidak diambil S7 tidak diambil tidak diambil S8 tidak diambil tidak diambil tidak diambil S9 S10 tidak diambil tidak diambil S11 tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil S12 tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil S13 tidak diambil tidak diambil S14 tidak diambil tidak diambil

TPC

Standar

Ket

4,0 x 105

1,0 x 106

8,1 x 105

8,5 x 105 1,4 x 106

9,3 x 105

>BMCM

1,0 x 106

4,2 x 105

1,6 x 106

>BMCM

1,1 x 106

>BMCM

22

No

Sampel

16

Sp 16

17

Sp 17

18

19

20

21

22

23

24

Sp 18

Sp 19

Sp 20

Sp 21

Sp 22

Sp 23

Sp 24

Uji CMT Kuartir Skoring A Negatif B Negatif C Negatif D Negatif A Negatif B Positif 2 C Positif 2 D Negatif A Negatif B Positif 2 C Negatif D Positif 2 A Negatif B Positif 2 C Positif 2 D Negatif A Negatif B positif 2 C Atrofi D Positif 1 A Negatif B Negatif C Positif 3 D Negatif A Positif 2 B Atrofi C Positif 1 D Positif 2 A Negatif B Negatif C Negatif D Positif 3 A Negatif B Positif 2 C Positif 1 D Negatif

Kode tabung tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil tidak diambil S16 S15 tidak diambil tidak diambil S18 tidak diambil S17 tidak diambil S20 S21 tidak diambil tidak diambil S24 tidak diambil S23 tidak diambil tidak diambil S19 tidak diambil S26 tidak diambil S25 S27 tidak diambil tidak diambil tidak diambil S28 tidak diambil S30 S29 tidak diambil

TPC

Standar

Ket

3,0 x 104 56 x 105

2,3 x 106

>BMCM

2,2 x 105 1,0 x 106 1,3 x 106 1,6 x 106

6,1 x 105 9,5 x 105

6,5 x 105 5,,4 x 105 4,9 x 105 2,1 x 105

1,6 x 105 1,8 x 105 1,9 x 105

>BMCM >BMCM

23

No

Sampel

Uji CMT Kode tabung TPC Standar Ket Kuartir Skoring 25 Sp 25 A Negatif tidak diambil B Negatif tidak diambil C Negatif tidak diambil D Negatif tidak diambil 26 Sp 26 A Positif 3 S33 1,9 x 105 B Negatif tidak diambil C Negatif tidak diambil D Negatif tidak diambil 27 Sp 27 A Positif 2 S22 9,5 x 105 B Negatif tidak diambil C Negatif tidak diambil D Negatif tidak diambil 28 Sp 28 A Negatif tidak diambil B Positif 2 S31 2,4 x 105 C Negatif tidak diambil D Positif 2 S32 1,4 x 105 Keterangan: A : kuartir depan kanan, B : kuartir depan kiri, C : kuartir belakang kanan, D: kuartir belakang kiri Berdasarkan data pada Tabel 5 diketahui bahwa terdapat 6 dari 35 susu yang diuji TPC berada di atas ambang Batas Maksimum Cemaran Mikroba (BMCM). Keseluruhan susu yang memiliki nilai di atas BMCM berasal dari kuartir sapi yang positif mastitis subklinis. Susu yang memiliki rataan jumlah total tertinggi adalah 2,3x106 yang berasal dari kuartir sapi yang mastitis subklinis dan yang terendah bernilai 2,0 x 104 yang berasal dari kuartir sapi yang sehat. Data pada Tabel 5 menunjukkan adanya susu yang berasal dari kuartir sapi yang mastitis subklinis (kode S16) yang memiliki nilai TPC lebih rendah dibandingkan dengan susu dari sapi yang tidak mastitis (Kode S35), hal ini dapat menunjukkan bahwa nilai TPC pada susu tidak memiliki kaitan dengan kejadian mastitis yang menyerang sapi perah, ini dikarenakan tidak semua bakteri yang dideteksi pada susu dapat menyebabkan peradangan pada jaringan internal ambing. Hasil kultur bakteri pada media Nutrient Agar (NA) dapat dilihat pada Gambar 4. 2

24

A B Gambar 4.2. Media NA sebagai kontrol (A) dan Hasil penanaman bakteri pada media NA (B) 4.3. Deteksi keberadaan Staphylococcus aureus Susu yang berasal dari sapi yang mastitis subklinis dan sapi yang sehat dilakukan uji lanjut untuk mengetahui apakah terdapat bakteri S.aureus. Pengujian terhadap susu dari sapi yang sehat dapat menjadi pembanding keberadaan S.aureus yang menyebabkan infeksi pada ambing. Susu yang telah diambil kemudian diisolasi dan akan dilanjutkan dengan uji identifikasi yang meliputi pengamatan karakteristik koloni, uji katalase, pewarnaan Gram, uji koagulase, uji fermentasi manitol pada media Mannitol Salt Agar (MSA), dan uji patogenitas pada media Blood Agar Plate (BAP). Isolasi dilakukan pada media Baird Parker Agar (BPA) yang merupakan media selektif untuk Staphylococcus karena adanya kandungan Sodium Piruvat yang merangsang pertumbuhan Staphylococcus. Koloni Staphylococcus aureus memiliki ciri bundar, licin, berlemak/lengkat, berwarna abu-abu hingga kehitaman, cembung. Hasil kultur bakteri pada media Baird Parker Agar (BPA) dapat dilihat pada Gambar 4.3

Gambar 4.3. Koloni hasil penanaman pada media BPA

25

Identifikasi diawali dengan uji katalase untuk membedakan antara Streptococcus sp. dan Staphylococcus sp. Genus Staphylococcus memiliki ciri katalase positif yang ditandai dengan terbentuknya gelembung gas. Enzim katalase yang dihasilkan berfungsi sebagai katalis yang menguraikan Hidrogen Peroksida (H2O2) menjadi air (H2) dan oksigen (O2) sehingga jika koloni bakteri dicampurkan dengan H2O2 akan menghasilkan gelembung-gelembung gas. Gambar 4.4 (A) menunjukkan adanya gelembung gas yang berarti katalase positif. Bakteri genus Staphylococcus merupakan bakteri Gram positif, morfologi kokus dan bergerombol, ini dapat dilihat dengan jelas dengan melakukan pewarnaan Gram. Hasil pewarnaan Gram yang dilakukan menunjukkan bakteri berwarna ungu dengan morfologi kokus dan bergerombol seperti anggur (Gambar 4.4 B).

A

B

Gambar 4.4. Katalase Positif (A) dan morfologi Staphylococcus sp yang berwarna ungu dan bergerombol dilihat melalui mikroskop (B) Hasil identifikasi (Uji Katalase dan pewarnaan Gram) yang dilakukan diketahui bahwa dari 33 susu yang berasal dari 22 sapi yang mastitis subklinis, didapatkan 20 susu yang berasal dari 17 sapi mengandung bakteri Staphylococcus sp. dan 2 susu yang berasal dari kuartir sapi yang sehat didapatkan 1 susu mengandung bakteri Staphylococcus. Uji koagulase merupakan uji identifikasi yang penting. Produksi enzim koagulase menjadi faktor patogenitas dari S.aures yang membedakan dari Staphylococcus lainnya (Bello dan Qahtani, 2004). Enzim koagulase yang dihasilkan oleh S.aureus mampu menggumpalkan plasma darah. Kerja enzim ini menyerupai protrombin yang dapat mengubah fibrinogen menjadi fibrin. Gambar 4.5 menunjukkan terjadinya gumpalan pada plasma darah yang menandakan koagulase positif.

Gambar 4.5. Hasil Uji Koagulase

26

Identifikasi kemudian dilanjutkan dengan uji fermentasi manitol dengan penanaman pada media Mannitol Salt Agar (MSA). Uji ini merupakan prosedur utama yang biasa digunakan setelah uji koagulase dalam mengindentifikasi S.aureus. Kandungan Natrium Chlorida (NaCl) yang tinggi pada media MSA membuat media ini menjadi media yang selektif terhadap S.aureus, karena bakteri lain tidak dapat bertahan pada kondisi demikian, sehingga jika bakteri Staphylococcus dapat menghasilkan enzim koagulase dan mampu memfermentasikan manitol pada MSA maka dapat disimpulkan bahwa bakteri tersebut adalah S.aureus (Sari, 2003). Gambar 4.6 menunjukkan hasil kultur pada media MSA, koloni S.aureus berwarna keemasan dan mengubah warna media yang merah muda menjadi kuning keemasan, hal ini karena kemampuan S.aureus menghasilkan asam dan menyebabkan perubahan pada media.

Gambar 4.6. Hasil kultur pada media MSA Bakteri lain dari genus Staphylococcus yang dapat tumbuh pada media ini yaitu S.epidermidis namun bakteri tersebut tidak dapat memfermentasikan manitol sehingga tampak warna koloni yang putih dan warna media yang tetap merah muda. Hasil pengujian yang dilakukan diperoleh sebanyak 4 susu yang berasal dari 4 sapi (14,28) yang menderita mastitis subklinis mengandung bakteri Staphylococcus yang bersifat koagulase positif dan mampu memfermentasikan manitol pada media MSA dan sampel yang berasal dari sapi normal tidak tumbuh pada media Mannitol Salt Agar (MSA) dan koagulase negatif. Setelah pengujian identifikasi keberadaan S.aureus, koloni ditumbuhkan dengan cara streak pada Blood Agar Plate (BAP). Penanaman koloni S.aureus pada BAP dilakukan untuk melihat kemampuan bakteri dalam menghemolisis eritrosit sehingga pada Blood Agar Plate akan terlihat zona hemolisis di sekitar koloni (Gambar 4.7).

27

Gambar 4.7. Hasil kultur pada media Blood Agar 4.4. Mastitis Subklinis oleh Staphylococcus aureus Mastitis subklinis diketahui dapat disebabkan oleh berbagai jenis bakteri, salah satunya Staphylococcus aureus (S.aureus). Uji lapangan yang dilakukan terhadap 28 ekor sapi diketahui bahwa 22 ekor sapi (78,75%) menderita mastitis subklinis. Uji laboratoris yang dilakukan terhadap susu yang berasal dari 22 sapi perah yang positif mastitis subklinis dinyatakan terdapat 17 ekor sapi (60,71%) mengandung bakteri Staphylococcus sp. Oliver (2000) mengemukakan bahwa mastitis yang disebabkan oleh Staphylococcus dapat mencapai 70% dalam suatu peternakan. Kirkan dkk. (2003) mengemukakan hasil penelitiannya yang menunjukkan 145 (48,33%) sampel dari 300 sampel yang mastitis ditemukan bakteri Staphylococcus sp. sedangkan Tirnata (2010) mendeteksi 100 (50%) sampel positif Staphylococcus dari 200 sampel yang mastitis. Hasil pengujian identifikasi untuk mengetahui keberadaan S.aureus ditemukan bahwa sebanyak 4 ekor sapi (14,28%) menderita mastitis subklinis yang disebabkan oleh bakteri tersebut. Berdasarkan penelitian Agus (1991); Tirnata (2010); Sugiri dan Anri (2010); Prayitno (2013) dapat diketahui bahwa kejadian mastitis yang disebabkan oleh S.aureus pada suatu peternakan cukup tinggi. Staphylococcus aureus merupakan salah satu bakteri kontagiosa (Fox, 2000) dan bakteri ini dapat diisolasi dari permukaan kulit manusia maupun hewan. Keberadaannya sebagai penyebab mastitis pada sapi berhubungan dengan kebersihan lingkungan dan higienitas pemerahan. Kondisi lingkungan yang diamati menunjukkan sanitasi beberapa kandang masih kurang baik, saluran pembuangan dan tempat penampungan feses dekat dengan tempat penyimpanan pakan ataupun air sehingga dengan kondisi yang demikian kemungkinan terjadinya infeksi strain S.aureus yang bukan berasal dari manusia dan hewan sangat besar. Sesuai dengan pernyataan Roberson dkk. (1994) dan Subronto (2003) bahwa selain dapat diisolasi dari kulit, S.aureus juga dapat diisolasi dari peralatan kandang, lingkungan kandang dan juga alat pemerahan, sehingga seringkali ditemukan strains S.aureus yang bukan berasal dari sapi maupun manusia terkandung dalam susu (Gambar 4.8)

28

Gambar 4.8. Kondisi beberapa kandang dan sapi di Kecamatan Cendana Higienitas pemerahan meliputi sebelum pemerahan, saat pemerahan dan setelah pemerahan. Hasil pengamatan yang dilakukan terlihat pada saat pemerahan masih terdapat kotoran di sekitar sapi ataupun kandang. Pemerahan dilakukan dengan menggunakan alat-alat yang sederhana berupa ember plastik penampung susu yang pada beberapa peternak terlihat menggunakan ember plastik bekas cat dinding, serta kontainer penampungan susu yang tidak ditutup selama pemerahan. Selain itu, kebiasaan peternak yang tidak melakukan dipping sebelum dan sesudah pemerahan diduga dapat meningkatkan resiko mastitis. Safangat dkk. (2013) mengemukakan bahwa dipping yang dilakukan setelah pemerahan dapat menurunkan resiko kejadian mastitis karena dapat mencegah pertumbuhan dan membunuh kuman pada puting, dan menurut hasil penelitian yang dilakukan Yuliana (2014) diketahui bahwa perlakuan predipping dapat meminimalkan jumlah bakteri dan kejadian mastitis pada sapi perah sebesar 60%.

29

5 SIMPULAN DAN SARAN 5.1. Simpulan Hasil penelitian dapat disimpulkan bahwa dari 28 ekor sapi perah ditemukan 22 ekor sapi perah (78,57%) yang positif mastitis subklinis dengan uji CMT dan 4 ekor sapi (14,28) yang positif mastitis disebabkan oleh S.aureus. 5.2. Saran Berdasarkan penelitian hasil penelitian disarankan untuk : 1. Perlu adanya penelitian mengenai keberadaan bakteri S.aureus sebagai penyebab mastitis subklinis di kecamatan lain di Kabupaten Enrekang. 2. Perlu diadakan sosialisasi kepada peternak mengenai manajemen pemeliharaan dan higienitas pemerahan serta pemeriksaan mastitis subklinis secara rutin agar cepat mendapat tindakan oleh dinas terkait.

30

DAFTAR PUSTAKA Abrar, Mahdi. 2009. Peranan hemaglutinin Escherichia coli dalam proses adhesi. Jurnal Kedokteran Hewan. 3(1):194-198. Abrar,Mahdi, I Wayan T.W, Bambang Pontjo P, Mirnawati S, dan Fachriyan H.P.2013. Peranan Hemaglutinin Staphylococcus aureus dalam proses adhesi sel epitel ambing sapi perah . Agus, M. 1991. Mastitis study in dairy cattle in Baturraden. Hemerazoa, 74, 21 24. Anonim. 2011a. Anatomy of The Mammary Gland. http://nydairyadmin.cce.comel.edu/pdf/submission/pdf255pdf.pdf. Diakses 21 September 2014 Anonim. 2011b. Bakteri Staphylococcus aureus, Klasifikasi, Sifat Gran dan Morfologi. http://pujipeje.blogspot.com/2012/05/bakteri-staphylococcus.html Diakses 21 September 2014 Anonim. 2011c. Uji Biokimia. http://lentera-icha.blogspot.com/2011/06/ujibiokimia.html. Diakses 20 September 2014 Anonim. 2012. Manual Penyakit Hewan Mamalia. Subdit Pengamatan Penyakit Hewan .Jakarta. Anonim. 2013. Uji Mannitol (MSA). .http://indahdwioktaviani.blogspot.com/2013/02/uji-mannitol.html. Diakses 1 Maret 2014 Anri, A. 2008. Manual on Mastitis Control. The Project for Improvement of Countermeasures on the Productive Diseases on dairy Cattle in Indonesia. Jica Indonesia Office, Jakarta. Bannerman, D. D. dan R. J. Wall. 2005. A Novel Strategy for the Prevention of Staphylococcus aureus-Induced Mastitis in Dairy Cows. Information Systems for Biotechnology News Report. Virginia Tech University. USA. 1 - 4. Bello, C. S. S dan A. Qahtani. 2005. Pitfalls in the routine diagnosis of staphylococcus aureus. African J. of Biotechnology. 4 (1): 83 - 86. Blakely, J dan D.H. Bade. 1991. Ilmu Peternakan, edisi ke- 4. Gadjah Mada University Press. Jogjakarta. Blood, D.C. dan J.A. Henderson. 2007. Disease Associated with Bacteria. Veterinary Medicine. A Textbook of the Disease Bailliere Tindall, London. Boerlin, P, P. Kuhnert, D. Hussy dan M. Schaellibaum. 2003. Methods for identification of staphylococcus aureus isolates in cases of bovine mastitis. J. of Clinical Microbiology. American Society for Microbiology. 41 (2): 767 - 769. [BSN] Badan Standardisasi Nasional. 2008. SNI 2897:2008. Metode Pengujian Cemaran Mikroba Dalam Daging, Telur dan Susu, Serta Hasil Olahannya. [BSN] Badan Standardisasi Nasional. 2011. SNI 2332.9:2011. Cara Uji Mikrobiologi-bagian 9: Penentuan Staphylococcus aureus Pada Produk Perikanan. Cappucino, J. G. dan N. Sherman. 2005. Microbiology: A Laboratory Manual. 7th ed. Pearson Education Inc. USA. 101 - 102, 117, 164, 166, 189, 204, 409 416, 509 - 512. Garcia, A. 2004. Contagious vs. Environmental Mastitis.

31

Extension Extra Dairy Science. South Dakota State University. USA. 4028: 1 - 4. Carter, G.R. dan Wise, D.J., 2004. Essentials of Bacteryology and Mycology. 6th. Ed, Iowa State Press. Pp 193 – 195 Darmansah, Inda. 2011. Penilaian Kualitas Susu Sapi Berdasarkan Jumlah Total Mikroorganisme Escherichia Coli dan Staphylococcus aureus di Kabupaten Bogor, Cianjur, Bandung, Sumedang dan Tasikmalaya Jawa Barat (Skripsi). Bogor: Fakultas Kedokteran Hewan. Institut Pertanian Bogor. Dinas Pertanian Daerah Kabupaten Enrekang. 2008. Laporan Pelaksanaan kegiatan Tahun 2008. Bidang Produksi Peternakan, Enrekang. [FAO] Food and Agriculture Organization. 2008. Manual Untuk Paramedis Kesehatan Hewan. Budi Tri Akoso, dkk, penerjemah; Retno Yuliastuti, Budi Tri Akoso, editor.Sleman (ID): PT. Tiara Wacana Yogya. Terjemahan dari: Manual for Animal Health Auxilliary Personnel, Ed ke-2 Foley CR, Bath LD, Dickinson NF, Tucker AH. 1972. Dairy Cattle: Principles, Practices, Problems, Profits. Philadelphia: Lea & Febiger. Fox, M. T. 2000. Identification of Gram-Positive Bacteria: Normal Flora Staphylococci. Frank J.F. 2001. Milk and Dairy Products. Dalam Doyle M.P., Food Microbiology: Fundamentals and Frontiers. Edisi k-2. Washington DC: sam Press. Frandson, R.D. 1992. Anatomi dan Fisiologi Ternak Edisi ke-4. Gadjah Mada University Press. Yogyakarta. Handayani KS dan Maya P. 2010. Kesehatan ambing dan higien pemerahan di peternakan sapi perah desa pasir buncir kecamatan caringin. Jurnal Penyuluhan Peternakan. Vol.5 (1) Harmon, R.J. 1994. Mastitis and genetic evaluation for somatic cell count. J. Dairy Sci. 77 (7) : 1151- 1161. Hidayat. A, dkk. 2002. Buku Petunjuk Teknologi Sapi Perah Si Indonesia : Kesehatan Pemerahan. Dairy Technologi Improvement Project. PT. Sonysugema Presindo. Bandung. Hidayat A, 2008. Buku Petunjuk Praktis untuk Peternak Sapi Perah tentang, Manajemen Kesehatan Pemerahan. Dinas Peternakan Propinsi Jawa Barat. Holtenius, K., S. Agenäs, C. Delavaud dan Y. Chilliard. 2003. Effects of feeding intensity during the dry period: 2. Metabolic and hormonal responses. J. Dairy Sci. 86:883-891. Hurley, W.L. dan D. E. MORIN. 2000. Mastitis lesson A. Lactation Biology. ANSCI 308. http://classes aces.uiuc.edu/Ansci 308/. Diakses 25 Oktober 2014. Jawetz, E., J. L. Melnick dan E. A. Adelberg. 2001. Medical Microbiology. 22nd edition. McGraw Hill Companies Inc. USA. 223 - 233, 317 – 326. Jones, G.M. 2009. Understanding The Basic of Mastitis. Virginia. Cooperative Extension. Publication 404-233 Kasim, dkk.. 2011. Strategi pengembangan usaha sapi perah di kabupaten enrekang. Jurnal Agribisnis. 10(3).

32

Kirkan, S., E. O. Goksoy dan O. Kaya. 2003. Identification and antimicrobial susceptibility of staphylococcus aureus and coagulase negative staphylococci from bovine mastitis in the aydin region of turkey. Turk. J. Vet. Anim. Sci. 29 (2005): 791 - 796. Lestari D. T., 2006, Laktasi Pada Sapi Perah Sebagai Lanjutan Proses Reproduksi, Fakultas Peternakan Universitas Padjajaran. Levinson, W., E. Jawetz. 2003. Medical Microbiology & Immunology: Examination & Board Review. 7th ed. McGraw-Hill Companies Inc. Singapore. 91 - 95, 437. Lukman DW, Sudarwanto M, Sanjaya AW, Purnawarman T, Latif H, Soejoedono RR. 2009. Pengaruh mastitis terhadap kualitas susu. Di dalam: Pisestyani H, editor. Higiene Pangan. FKH IPB. Bogor: Kesmavet FKH IPB. Martin SW, Meek AH, Willeberg P. 1987. Veterinary Epidemiology. USA: Iowa State University Press. McFadden, Michael. 2011. California Mastitis Test and Milk Quality. Michigan Dairy Review. Vol. 16 No 2 http://dairyteam.msu.edu/uploads/file/cmt.pdf Diakses pada 6 November 2014 Mulyani A, Las I. 2008. Potensi sumber daya lahan dan optimalisasi pengembangan komoditas penghasil bioenergi di Indonesia. Jurnal Litbang Per 27 (1). 31-41. Nurdin E. dan Mihrani, 2006, Pengaruh pemberian bunga matahari dan bioplus terhadap produksi susu dan efisiensi ransum sapi perah freis holland penderita mastitis, Jurnal Agrisistem 2 (2). Oliver, S. P. 2000. Mastitis in Heifers: Prevalence, Strategy for Control during the Periparturient Period, and Economic Implications. Proceeding British Mastitis Conference. Institute for Animal Health/Milk Development Council. 1 - 13. Prayitno. 2013. Isolasi dan Identifikasi Bakteri Pada Susu Mastitis Subklinis di Koperasi Ternak Sarono Makmur Sabrang Wetan Wukirsari Cangkringan Sleman (skripsi). Yogyakarta: Fakultas Kedokteran Hewan UGM. Universitas Gadjah Mada. Prihadi. S. 1997. Tata Laksana dan produksi Ternak Perah. Fakultas Peternakan. Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta. Purnomo A, Hartatik, Khusnan, Salasia SIO, Soegitono. 2006. Isolasi dan karakterisasi Staphylococcus aureus asal usus kambing peranakan ettawa. Media Kedokteran Hewan. 22(2):142-147. Rahayu, I.D. 2009. Kerugian ekonomi mastitis subklinis pada sapi perah. Fakutas Pertanian Jurusan Peternakan. Universitas Muhammadiyah Malang. Roberson, J. R., L. K. Fox, D. D. Hancock, J. M. Gay and T. E. Besser. 1994. Ecology of staphylococcus aureus isolated from various sites on dairy farms. J. Dairy Sci. 77 (11): 3354 - 3364. Rombaut R., 2005. Dairy Microbiology and Starter Cultures. Laboratory of Food Technology and Engineering.Gent University. Belgium. Safangat A, Sarwiyono dan Puguh Surjowardojo. 2013. Pengaruh penggunaan jus daun kelor (Moringa Oleifera) untuk teat dipping terhadap kejadian mastitis subklinis sapi perah FH laktasi (jurnal). Malang: Fakultas Peternakan. Universitas Brawijaya Saksono I dan L Saksono.1986. Pengantar Sanitasi Makanan. Bandung:Alami

33

Salasia O.I.S., Wibowo H.M., Khusnan, 2005, Karakterisasi Fenotipe Isolat Staphylococcus aureus Dari Sampel Susu Sapi Perah Mastitis Subklinis, Bagian Patologi Klinik, Fakultas Kedokteran Hewan UGM, Jurnal Sain Veteriner. Vol. 23 No. 2, Yogyakarta. Sari, R. W. 2003. Pengaruh Pemberian Gerusan Daun Sirih Hitam, Gerusan Daun Sirih Jawa dan Oksitetrasiklin Secara Topikal Terhadap Lama dan Waktu Kesembuhan Luka Infeksi Staphylococcus aureus pada Tikus Putih (Skripsi). Fakultas Kedokteran Hewan. Universitas Airlangga. Surabaya. Setiawan, J., R.R.A. Maheswari, dan B.P. Purwanto. 2013. Sifat fisik dan kimia, jumlah sel somatik dan kualitas mikrobiologis susu kambing peranakan ettawa. Acta Veterinaria Indonesiana. 1(1):32-43. Siregar, Sori basya, M.S. 1990. Sapi Perah. Penebar Swadaya, Jakarta. Subronto. 2003. Ilmu Penyakit Ternak I. Edisi Kedua. Gadjah Mada University Press. Yogyakarta. Sudarwanto M. 1982. Penggunaan metode Aulendorfer Mastitis Probe (AMP) untuk mendiagnosa mastitis subklinik. Prosiding Pertemuan Ilmiah Ruminansia Besar, Pusat Penelitian dan Pengembangan Peternakan, Balai Penelitian dan Pengembangan, Departemen Pertanian; Bogor, 7-9 Desember 1982. Bogor: Puslitbang Peternakan, Balitbang Pertanian, Dep. Pertanian. Sudarwanto M, Sanjaya AW, Soejoedono R, Siregar EA, Rumawas I, Yuwono BS. 1984. Gambaran kasus mastitis di Kabupaten Bogor, Cianjur, dan Sukabumi berdasarkan perhitungan jumlah sel radang dengan menggunakan metode Breed. Pertemuan Ilmiah Kongress PDHI IX; Bandung. Bandung: Kongress PDHI IX. Sudarwanto M. 1999. Mastitis subklinis dan cara diagnosa.(Makalah) Institut Pertanian Bogor, Bogor. Sudarwanto, M. 2009. Mastitis dan kerugian ekonomi yang disebabkannya. Makalah pada TOT JICA The 3rd. Oktober 2009, Cikole-Lembang, Bandung Barat. Sugiri, Y.D. dan Akira Anri. 2010. Prevalensi Patogen Penyebab Mastitis Subklinis (Staphylococcus aureus dan Streptococcus agalactiae) dan Patogen Penyebab Mastitis Subklinis Lainnya pada Peternakan Skala Kecil dan menengah di Beberapa Sentra Peternakan Sapi Perah di Pulau Jawa. Balai Pengujian dan Penyidikan Penyakit Hewan dan Kesmavet (BP3HK) Cikole Lembang Bandung Barat, Jawa Barat, Indonesia Sukada, IM. 1996. Kejadian Mastitis Subklinis oleh Streptococcus agalacticae di Daerah Semplak Bogor dan Pengaruhnya Terhadap Kualitas Susu (Tesis). Boogor: Program Pascasarjana. Institut Pertanian Bogor. Swartz, H.A. 2006. Mastitis in The Ewe. http://www.case.ageworld.com/cAw.LUmast.html. Diakses 4 November 2014. Taylor ER, dan G.T. Field. 2004. Scientific Farm Animal Production an Introduction to Animal Science. Ed ke-8. USA: Person Prentice Hall. Tirnata,LP. 2010. Identifikasi Staphylococcus aureus Penyebab Mastitis dengan Uji Fermentasi Manitol dan Deteksi Produksi Asetoin pada Sapi Perah di Wilayah Kerja Koperasi Usaha Tani Ternak Suka Makmur Grati Pasuruan. Veterenaria Medika. 1(1):1-12.

34

Todar,

K. 2005. Staphylococcus.: http://www.textbookofbacteriology net/staph.html. Diakses tanggal 6 November 2014. Tolan, R. W. 2008. Staphylococcus aureus infection. http://www.emedicine. com /ped/topic2704.htm. Diakses 6 November 2014. Tyler, H.D., dan M.E. Ensminger.2006. Dairy Cattle Science. Edisi ke-4. New Jersey Wahyuni A.E.T.H., Wibawan I.W.T., Wibowo M.H, 2005, Karakterisasi hemaglutinin streptococcus agalactiae dan staphylococcus aureus penyebab mastitis subklinis pada sapi perah. Jurnal Sain Veteteriner Vol. 23 No. 2, Bagian Mikrobiologi FKH-UGM, Yogyakarta . Wannet, W. J., E. Spalburg, M. O. Heck, N. Pluster, E. Tiemersma, and R.J. Willem. 2005. Emergence of virulent methicillin-resistant staphylococcus aureus strains carrying panton-valentine leucocidin genes in the netherlands. J Clin Microbiol. p. 3341–3345. Wiley, J., Sons., 2009. Mammary Gland in The seventh edition of Anatomy and Physiology of Farm Animals p. 450-455. Wiley-Blackwell. Winata F, 2011. Hubungan Antara Penggunaan Metode Breed Dengan Uji Mastitis IPB-1 Untuk Diagnosa Mastitis Subklinis (Skripsi). Bogor: Fakultas Kedokteran Hewan IPB. Institut Pertanian Bogor. Yuswari R. 2006. Kajian Cemaran Mikroba pada Susu Pasteurisasi Asal Pedagang Keliling di Wilayah Jakarta Selatan (tesis). Bogor. Sekolah Pasca Sarjana Institut Pertanian Bogor

35

1. Hasil Uji Mastitis subklinis dengan metode California Mastitis Test (CMT) dan deteksi keberadaan Staphylococcus aureus

LAMPIRAN N O

1

2

3

Identitas pemiliki

Nama

Alamat (Desa)

Ridwan

Pinang

Ridwan

Saharuddin

Pinang

Pinang

Lak tasi

Uji CMT

Ko Waktu de sampli ng sa mp el

∑Ko loni di BPA

K Skorin u g a r ti r

ke2

Ke1

Ke3

Kolo ni di BPA

Pewarnaan Gram

G Morfologi r a m

K MK H K a S o e e t A a m t a g o l u li a l s s a i e s d e i B l o o d A g a r

A Negatif B C D A

Negatif Negatif Negatif Negatif

-

B C D A

Negatif Negatif Negatif +3

S1

B +2

S2

5,1x 103

3,6x 103

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung, bulat, D=23mm Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung, basah ,

36

C +2

4

5

Silahuddin

Silahuddin

Pinang

Pinang

Ke2

Ke2

Suryadi

Pinang

Ke3

6,0x 103

D Atrofi A Negatif B C D A

Negatif Negatif Negatif Negatif S3 4

B +2

6

S3

D=24mm Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung, D=23mm

2,0x 102

Warn - Berbentuk a batang putih, pendek kerin g, datar Warn + Coccus, + + + + S a abubergeromb . abu, ol a cemb u ung, r basah e ,D=2u 3mm s

S4

1,2x 103

B Negatif S3 5

4,7x 102

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung, D=36mm

2,9x 103

Warn + Coccus, + + + + S a abubergeromb . abu, ol a cemb u ung, r D=2e 3mm u

C Negatif D Negatif A Negatif

C Negatif D +3 S5

37

s 7

Suryadi

Pinang

Ke1

A Negatif B Negatif C +2 S6

8

Mahyuddin

Lebang

Ke2

Mahyuddin

Lebang

Ke5

Lebang

Ke2

1,7x 103

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung

3,5x 103

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung,le ngket

Warn - Berbentuk a batang putih, pendek datar, D=35mm Warn + Coccus, a abutetrad abu, basah , cemb ung, D=34mm

D Negatif A Negatif B +1

10 Mahyuddin

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu,c ol embu ng, D=34mm

D Atrofi A Negatif B Negatif C +2 S7

9

2,1x 103

S8

C Negatif D Negatif A Negatif B +2

S9

2,7x 103

C +2

S1 0

3,1x 103

38

11 Mahyuddin

Lebang

Ke2

D Negatif A Negatif B +2

12 Mahyuddin

Lebang

Ke2

S1 1

14 Mahyuddin

Lebang

Lebang

Ke3

Ke2

Lebang

Ke2

5,9x 103

Warn a putih, cemb ung, D=36mm

6,0x 103

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung, D=24mm

1,9x 103

Warn + Coccus + a abubergeromb abu,c ol embu ng, lengk

+ Coccus, + bergeromb ol

A Negatif B C D A

Negatif Negatif Negatif Negatif

-

B Negatif C +3 S1 3

15 Mahyuddin

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung, D=35mm

C Negatif D Negatif A Negatif B Negatif C Negatif D +2 S1 2

13 Mahyuddin

3,6x 103

D Negatif A Negatif B +2

S1 4

39

et

16 Mahyuddin

17 Mahyuddin

18 H.Amiludd in

Lebang

Lebang

Lebang

Ke2

Ke2

Ke3

C Negatif D Negatif A Negatif B C D A

Negatif Negatif Negatif Negatif

B +2

S1 6

4,6x 103

C +2

S1 5

2,5x 103

H.Amiludd in

Lebang

Ke2

Warn + Coccus, a abutetrad abu, basah , cemb ung Warn - Berbentuk a batang, putih, pendek basah , datar, D=46mm

D Negatif A Negatif B +2

19

-

S1 8

3,2x 103

Warn - Berbentuk a abubatang abu, pendek datar, D=24mm

C Negatif D +2 S1 7

3,9x 103

Warn + Coccus, + + + + S a abubergeromb . abu, ol a cemb u ung, r D=3e 5mm u s

6,8x 103

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu,c ol

A Negatif B +2

S2 0

40

C +2

20 H.Amiludd in

21 Syamsiah

22 Halim

Lebang

Lebang

Lebang

Ke3

Ke4

Ke5

S2 1

3,1x 103

embu ng, D=23mm Warn a putih, kerin g, D=23mm

- Berbentuk batang

D Negatif A Negatif B +2

S2 4

8,0x 103

Warn + Coccus, a abuberantai abu,c embu ng, D=26mm

C Atrofi D +1

S2 3

6,1x 103

Warn + Coccus, + + + + S a abubergeromb . abu, ol a cemb u ung, r D=1e 3mm u s

B Negatif C +3 S1 9

5,0x 103

Warn + Coccus, a abuberantai abu, datar, D=24mm

D Negatif A +2 S2 6

3,5x 103

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol lengk et, cemb ung, D=2-

A Negatif -

41

4mm

23 Halim

Lebang

Ke4

B Atrofi C +1

S2 5

6,6x 103

D +2

S2 7

2,3x 103

A Negatif B Negatif C Negatif D +3 S2 8

24 Hamsiah

25 Hamsi

Lebang

Pinang

Ke3

Ke2

Warn - Berbentuk a batang putih, pendek kerin g, D=13mm Warn + coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung, D=35mm

6,0x 103

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung

Warn + Coccus, a abutetrad abu, kerin g, D=24mm Warn - Berbentuk a batang putih, pendek cemb ung, basah , D=13mm

A Negatif B +2

S3 0

2,0x 103

C +1

S2 9

2,3x 103

D Negatif A Negatif B Negatif C Negatif -

42

26 Halim

Pinang

27 Ridwan

Pinang

28 Ridwan

Pinang

Ke1

Ke1

D Negatif A +3 S3 3

1,2x 103

Warn + Coccus, a abuberantai abu, cemb ung, D=35mm

B Negatif C Negatif D Negatif S2 2

2,7x 103

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung, basah , D= 1-3 mm

A Negatif B +2 S3 1

3,2x 103

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung, basah , D=23 mm

C Negatif D +2 S3 2

4,1x 103

Warn + Coccus, + a abubergeromb abu, ol cemb ung, basah , D=24 mm

B C D A

Negatif Negatif Negatif +2

Keterangan: A : B :

Kuartir Depan Kanan Kuartir Depan Kiri

C : Kuartir Belakang Kanan D : Kuartir Belakang Kiri

43

Lampiran 2. Prosedur Kerja 1. Uji Katalase Prinsip Berdasarkan reaksi antara enzim katalase dengan Hidrogen Peroksida (H2O2) ditandai dengan terbentuknya gelembung-gelembung gas. Alat dan Bahan 1. Kaca objek 2. Ose 3. Bunsen 4. Bakteri Staphylococcus aureus dari Baird Parker Agar (BPA) 5. Hidrogen Peroksida (H2O2) Prosedur 1.Ose disterilkan di atas bunsen 2.Satu ose inokulum diambil dari BPA dan diletakkan di atas kaca objek 3.Hidrogen Peroksida (H2O2) dicampurkan dengan inokulum di atas kaca objek 4.Amati perubahan yang terjadi Hasil Bakteri Staphylococcus aureus menghasilkan enzim katalase yang dapat bereaksi dengan Hidrogen Peroksida (H2O2) 2. Pewarnaan Gram Prinsip Dinding sel bakteri bakteri gram positif memiliki afinitas tinggi terhadap Kristal violet Alat dan Bahan 1. Bunsen 2. Kaca objek 3. Ose 4. Mikroskop 5. NaCl fisiologis 6. Kristal Violet 7. Lugol 8. Alkohol 96% 9. Pewarna Fuchsin 10. Bakteri Staphylococcus aureus dari Baird Parker Agar (BPA) 11. Minyak emersi Prosedur 1. Kaca objek dibersihkan dengan alkohol 2. NaCl fisiologis diteteskan pada kaca objek 3. Ose disterilkan di atas bunsen 4. Satu ose inokulum diambil dari Baird Parker Agar (BPA) dan diratakan setipis mungkin bersama NaCl fisiologis di atas kaca objek lalu preparat difiksasi di atas bunsen

44

5. Kristal Violet diteteskan di atas preparat dan diamkan selama 2 menit lalu sisa zat warna kristal violet dibuang dan pereparat dibilas dengan air mengalir 6. Larutan lugol diteteskan di atas preparat dan diamkan selama 30 detik dan sisa larutan dibuang dan preparat dibilas dengan air mengalir 7. Preparat diteteskan dengan alkohol 96% sampai semua zat warna luntur dan segera dibilas dengan air mengalir 8. Larutan fuchsin diteteskan di atas preparat dan didiamkan selama 2 menit lalu dibuang sisa larutan dan dibilas dengan air mengalir 9. Preparat didiamkan hingga kering lalu teteskan minyak emersi di atas preparat dan amati di bawah mikroskop dengan perbesaran 100X Hasil Staphylococcus aureus tampak berwarna ungu dan bergerombol seperti anggur karena susunan dinding selnya yang terdiri dari peptidoglikan yang tebal dan tidak luntur oleh alkohol. 3. Koagulase Prinsip : Berdasarkan reaksi antara koagulase dari bakteri dengan plasma darah Alat dan Bahan 1. Ose 2. Bunsen 3. Kaca objek 4. Plasma darah manusia 5. Bakteri Staphylococcus aureus dari Baird Parker Agar (BPA) 6. NaCl fisiologis Prosedur 1. NaCl fisiologis diteteskan di atas kaca objek 2. Ose disterilkan di atas bunsen 3. Satu ose inokulum diambil dari Baird Parker Agar (BPA) lalu diratakan di atas kaca objek bersama NaCl 4. Plasma darah diteteskan pada kaca objek 5. Amati perubahan yang terjadi Hasil Staphylococcus aureus bersifat koagulase postif sehingga dapat menggumpalkan plasma darah. 4. Fermentasi Mannitol pada Mannitol Salt Agar (MSA) Prinsip Mikroorganisme yang tahan terhadap garam yang dapat tumbuh karena konsentrasi garam yang tinggi pada Mannitol Salt Agar (MSA) dan perubahan warna Mannitol Salt Agar MSA Alat dan Bahan 1. Ose 2. Bunsen 3. Media Mannitol Salt Agar (MSA) 4. Bakteri Staphylococcus aureus dari Baird Parker Agar (BPA)

45

Prosedur 1. Ose disterilkan di atas Bunsen 2. Satu ose inokulum diambil dari BPA dan kultur bakteri dengan cara streak pada media MSA 3. Inkubasi media MSA dalam inkubator dengan suhu 37oC selama 24 jam 4. Amati perubahan pada media Mannitol Salt Agar (MSA) Hasil Terjadi perubahan pada media Mannitol Salt Agar yang berwarna merah muda menjadi kuning keemasan. Perubahan terjadi akibat bakteri Staphylococcus aureus dapat memfermentasikan mannitol pada media Mannitol Salt Agar (MSA)

46

Lampiran 3. Dokumentasi Penelitian

Foto 1. Alat dan bahan di lokasi pengambilan sampel: reagen CMT, paddle test, botol steril, label, aluminium foil, alkohol

Foto 2. Wawancara dengan peternak dan pengamatan kondisi ternak

47

Foto 3. Pembersihan sapi dan pengambilan sampel

Foto 4. Sampel susu ditampung dalam tabung steril

Foto 5. Alat dan bahan di laboratorium

48

RIWAYAT HIDUP

Penulis dilahirkan pada tanggal 28 Maret 1992 di Kabupaten Pinrang Provinsi Sulawesi Selatan, dari ayahanda Abd. Halim, S.H, M.H dan ibunda Sitti Hajerah, S.H (Almarhumah). Penulis merupakan anak ke tiga dari empat bersaudara. Penulis menyelesaikan Sekolah Dasar di SD Inpres Perumnas Antang III pada tahun 2004, kemudian penulis melanjutkan pendidikan ke SMPN 23 Makassar dan lulus pada tahun 2007. Tahun 2010 penulis menyelesaikan pendidikan di SMAN 10 Makassar. Penulis diterima di Program Studi Kedokteran Hewan, Fakultas Kedokteran, Universitas Hasanuddin pada tahun 2010 melalui ujian lokal. Selama perkuliahan penulis aktif dalam organisasi internal dan eksternal kampus. Pada 2010/2011, penulis menjadi anggota biro sosial Forum Ukhuwah Muslimah Makassar, 2011/2012 sebagai anggota Divisi Kerohanian Himpunan Mahasiswa Kedokteran Hewan (HIMAKAHA) FKUH dan anggota Mahasiswa Pecinta Mushallah (MPM) Unhas.