MUESTRAS BIOLÓGICAS Y SU RECOGIDA

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BIOLÓGICAS Y SU RECOGIDA

Las muestras de producto biológicos para analizar pueden ser de distinto tipo según su procedencia. Así, tendríamos: × Muestras de orina. × Muestras de sangre. × Muestras de heces. × Muestras de vómitos. × Muestras de esputo. × Muestras de líquido cefalorraquídeo (LCR). × Muestras de contenido gástrico – duodenal. × Muestras de líquido seminal. × Muestras de piel, pelo y uñas. × Muestras de exudados: •

Exudado nasal.

•

Exudado faríngeo.

•

Exudado conjuntival

•

Exudado ótico.

•

Exudado uretral.

•

Exudado vaginal.

•

Exudado de heridas.

El personal de enfermería, generalmente, es el responsable de la obtención y recogida de las muestras biológicas. Sólo en casos excepcionales, bien por las características y complejidad de la técnica o bein por la enfermedad padecida por el paciente, será el médico quien lleve a cabo el procedimiento de obtención de la muestra, como es el caso de LCR o de cierto tipo de exudados.

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El AE interviene en el proceso: × preparando al paciente y todo el material necesario. × ayudando durante el procedimiento de obtención de la muestra. × recogiendo todo el material. × dejando al paciente cómodamente instalado después de la prueba cuando está hospitalizado.

Normas generales de actuación respecto a muestras de productos biológicos para analizar Normas generales de seguridad en la recogida y manipulación de muestras Existen unas normas generales de seguridad para la recogida y manipulación de muestras de contenidos biológicos que deben seguirse siempre, independientemente del tipo de muestra a extraer: ¤

Toda muestra debe ir acompañada de un impreso o solicitud del estudio. Este impreso será distinto en cada centro sanitario y siempre habrá de ser cumplimentado por el médico, que es el único que podrá solicitar el análisis. En algunas áreas sanitarias hay un tipo de impreso único en el que se solicitan todas las pruebas analíticas; en otros, cada tipo de muestra tiene su propio impreso. No obstante, sea cual sea el que se use, en él deberá poderse leer de forma clara los siguientes datos:

Tipo de análisis que solicita.

Si es urgente o no.

Nombre, apellidos, edad y sexo del paciente.

Número de cama, de afiliación a la Seguridad Social y de historia clínica.

Datos clínicos: fecha de comienzo de la enfermedad, diagnóstico clínico de presunción...

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Nombre del facultativo que solicita el análisis y servicio al que pertenece.

Fecha de la petición y fecha de la obtención de la muestra, así como el procedimiento de extracción y si se ha seguido alguna técnica especial.

Terapéutica seguida: antibióticos que se han administrado y tiempo desde la última toma.

¤

El paciente debe estar informado del tipo de muestra requerida y del procedimiento que vamos a utiliza para su obtención. Así como precauciones a tener en cuenta antes de la recogida o toma de las muestras.

¤

La preparación de los materiales y obtención de la muestra deben hacerse en condiciones de asepsia para asegurar la fiabilidad del resultado y evitar contaminación que falsee el diagnóstico.

¤

Manipular las muestras siempre con guantes, para evitar el riesgo del contagio del personal sanitario.

¤

Utilizar, siempre que sea posible, recipientes desechables, manipulándolos con el mayor cuidado posible.

¤

Al obtener una muestra estamos manipulando residuos biológicos; por lo tanto, debemos adoptar las medidas universales de precaución que ya se han visto en un módulo anterior. Se procesan los recipientes como residuos biológicos.

¤

Una vez obtenida la muestra, la identificaremos correctamente para evitar confusiones y pérdidas.

¤

Debemos tomar las medidas necesarias que aseguren su correcto mantenimiento, conservación y transporte de la muestra hasta el servicio de laboratorio para su análisis.

Normas generales de conservación y transporte de las muestras. Una vez obtenida la muestra, es importante que se haga llegar al laboratorio con celeridad para no alterar sus características y dificultar el análisis. El procedimiento de obtención de muestras se realiza teniendo en cuenta las características de las muestras y la organización de cada hospital, centro sanitario o laboratorio.

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El personal que interviene en el proceso debe tener la formación, habilidades y experiencia necesarias para garantizar que se cumplan los siguientes objetivos respetando la normativa vigente:

Mantener la integridad de las muestras para garantizar la estabilidad de sus propiedades biológicas.

Conservar las características originales de las muestras, para garantizar que los resultados obtenidos en su análisis sean lo más próximos posible a su valor verdadero.

Cumplir las condiciones y los requisitos de seguridad para disminuir o minimizar al máximo el riesgo que puede conllevar el proceso.

Tipos de envase para la toma de muestras ¤

Frascos de boca ancha, de plástico y con tapa de rosca: permiten recoger las muestras sin manipularlas excesivamente y sin que haya riesgo de que se contaminen. Se comercializan estériles. Hay distintos tipos:

Frascos para urocultivo: 150 ml.

Frascos para heces: con una cucharilla para su recogida.

Frascos para esputo: 30 ml. Pueden sustituirse por una placa de petri.

¤

Frascos de boca estrecha: para muestras cuya recogida sea menos dificultosa, reduciéndose la posibilidad de contaminación.

¤

Hisopos: se emplean para tomas de muestra de orificios naturales y de heridas.

¤

Jeringas: para la extracción de sangre u otros líquidos de cavidades sin acceso o en el caso en que se quiera determinar la posible existencia de organismos anaerobios.

Precauciones ante el transporte de la muestra: Riesgos posibles y soluciones ¤

Proliferación bacteriana: a Tª ambiente es muy intensa, por tanto, no admiten demora en su análisis. Algunas permiten que el análisis se retrase si están refrigeradas.

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¤

Contaminación de la muestra: puede ocurrir por una mala calidad del envase o por una excesiva manipulación, lo cual dará lugar a múltiples errores.

¤

Pérdida de la actividad biológica de microorganismos: Muchos microorganismos, al ser extraídos del ser humano, mueren. Para evitarlo hay que utilizar sustancias para el transporte de la muestra que mantengan su viabilidad (p.ej. el medio de Stuart: evita la desecación y muerte de microorganismos recogidos con un hisopo estéril).

¤

Diseminación de los microorganismos al exterior: debida a una mala manipulación de la muestra, rotura, extravío, etc., siendo un material peligroso, en muchos casos microorganismos con un alto índice de virulencia. Se evita educando y formando al personal sobre la importancia del material transportado, utilizando materiales adecuados, identificándolos correctamente, protegiéndolos dentro de otros recipientes, etc.

¤

Transporte para estudios de anaerobiosis: Es necesario eliminar el oxígeno. Para ello, se recomiendan tubos que contienen CO2. Si la muestra se obtiene con un hisopo, el tubo en el que lo introduciremos debe estar en condiciones anaeróbicas.

Obtención de muestras de productos biológicos para analizar Muestras de orina. Los análisis de orina y, en consecuencia, la obtención de muestras de orina, son actuaciones que se llevan a cabo con mucha frecuencia; son algo rutinario en la práctica clínica. La muestra de orina es relativamente fácil de obtener, ya que implica escasa molestia para el paciente; además, aporta gran cantidad de información al clínico. Características de la orina: La orina presenta una serie de características que hacen referencia a los aspectos físicos que se aprecian a través de los sentidos y que incluyen los siguientes parámetros: Aspecto: claro y límpido. Cuando se deja en reposo durante cierto tiempo, puede aparecer cierto grado de turbidez en el fondo del tubo debido a la sedimentación de sus componentes. Alteraciones: Si aparece turbia, puede ser debido a la presencia de pus, sangre, proteínas, cristales, bacterias, etc. Cantidad: el volumen normal de orina que se elimina en 24 h (diuresis) oscila entre los 850 y 2.500 ml.

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Alteraciones: o

Poliuria: volumen de orina superior a 2.500 ml.

o

Oliguria: volumen de orina inferior a 500 ml.

o

Anuria: si hay una falta total de eliminación de orina o, en todo caso, inferior a 100 ml.

Color: su color, en situación normal, es entre amarillo pálido y ámbar oscuro, que puede variar en función de los alimentos y líquidos ingeridos, temperatura exterior, pérdida de líquidos. Alteraciones: o

Azul verdoso: significa presencia de bacterias.

o

Marrón rojizo: presencia de sangre: Hematuria.

o

Marrón negruzco: presencia de bilirrubina.

o

Anaranjado fuerte: indica disminución de la diuresis y, por tanto, la orina está más concentrada.

Olor: es característico debido a la presencia de sustancias volátiles. Puede variar en función de la dieta, la concentración, el tratamiento farmacológico, etc. Alteraciones: o

Amoniacal: orina vieja (la urea se transforma en amoniaco).

o

Cetónico o a frutas: debido a un proceso de deshidratación o aumento de glucosa (diabéticos).

o

Pútrido: debido a un proceso infeccioso.

o

Fecaloideo: orina contaminada por heces.

Espuma: en condiciones normales, al agitar la muestra se forma espuma blanca y abundante que desaparece rápidamente. Alteraciones: Si la espuma persiste durante un tiempo, indica presencia de proteínas y pigmentos biliares. Densidad: oscila entre 1.010 y 1.020.

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En una muestra de orina se puede solicitar: o

Análisis rutinario o elemental: con él se obtiene información general sobre la composición de la orina (Ph, densidad,...), estudio bioquímico (presencia de proteínas, glucosa,...) y análisis del sedimento (presencia de células, cristales,...). o

Urocultivo: para este tipo de análisis se precisa que la muestra sea estéril. Con ella se pretende identificar en la muestra el crecimiento de algún germen que sea el causante de un proceso infeccioso.

o

Control de Diuresis - orina de 12/24 horas: con esta muestra debemos recoger toda la orina del paciente en 12/24 horas, anotar la cantidad y llevar una muestra a laboratorio para su análisis.

La recogida de las muestras de orina son realizadas por el AE bajo la supervisión del ATS. Los análisis de orina aportan una información importante, desde el punto de vista clínico, en gran número de procesos patológicos. Con estos análisis se pretende detectar posibles enfermedades de carácter funcional u orgánico, p. ej: o

Glucosuria: indica la presencia de glucosa en la orina.

o

Proteinuria: indica la presencia de una cantidad excesivas de proteínas séricas en la orina.

o

Leucocituria: indica la presencia de leucocitos en la orina.

Recogida de muestra de orina para análisis rutinario Para este tipo de análisis se necesita una muestra única de orina y no es necesario que ésta sea estéril, aunque debemos guardar correctas medidas de higiene y asepsia.

Material necesario. o

Impreso de solicitud para el análisis

o

Material para el aseo: solución limpiadora o jabón neutro, toallas o gasas. Si se utilizase yodo para la limpieza, hay que enjuagar cuidadosamente, ya que si quedasen restos, alteraría los resultados de la prueba.

o

Etiquetas con los datos del paciente o, en su defecto, etiquetas y rotulador indeleble.

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o

Bote estéril para recoger la muestra.

o

Guantes desechables.

o

Cuña o botella, para pacientes encamados.

Procedimiento. o

Explicar al paciente el procedimiento a realizar y solicitar su colaboración.

o

Si el paciente puede realizar la recogida por sí mismo, explicarle la técnica para que la lleve a cabo. Si no es así, el auxiliar se lavará y pondrá los guantes y colocará la cuña o botella al paciente.

o

Debe desecharse la primera parte de la micción para que se lave la uretra por arrastre. A continuación, se colocará el bote para que la orina caiga directamente en él, hasta llenarlo.

o

Si el paciente no colabora: se le coloca en DS y se le pone la cuña o la botella para recoger la primera parte de la micción. El resto se recoge en el bote directamente.

o

Se tapa el bote y se identifica correctamente con las etiquetas del paciente o un rotulador indeleble, en su defecto.

o

Recoger los materiales y la habitación, en su caso, y acomodar al paciente.

o

Quitarnos los guantes y lavarnos las manos.

o

Enviar la muestra al laboratorio o mantenerla en la nevera hasta su análisis.

o

Anotar las incidencias y el procedimiento realizado en la hoja de enfermería.

Obtención de la muestra o

La muestra idónea es la primera micción de la mañana.

Técnica en mujeres: o

Lavar las manos cuidadosamente con agua y jabón, secar con una toalla limpia.

o

Separar los labios mayores y menores, y mantenerlos separados en todo momento hasta que se haya recogido la orina.

o

Con una gasa enjabonada se lava bien la vulva pasándola de delante hacia atrás, se repetirá el proceso un total de 4 veces.

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o

Enjuagar cuidadosamente con agua hervida para eliminar los restos de jabón.

o

Se indicará a la paciente que orine desechando los 20-25 primeros mililitros, tras lo cual y sin interrumpir la micción, se recogerá el resto de la orina en el contenedor.

o

El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con pierna, vulva o ropa del paciente.

Técnica hombres: o

Lavado de las manos con agua y jabón.

o

Retraer completamente el prepucio, que se mantendrá así en todo momento, hasta que se haya recogido la orina.

o

Limpiar el glande y el área que envuelve el meato con jabón neutro, en movimiento circular hacia fuera para no desplazar los microorganismos del orificio hacia las vías urinarias.

o

Eliminar los restos de jabón enjuagándolo con agua hervida.

o

Se pedirá al paciente que orine desechando los primeros 20-25 mililitros, tras lo cual y sin interrumpir la micción, recogerse el resto de la orina en el contenedor.

Medidas especiales de conservación y transporte o

Conservación. La muestra ha de enviarse al laboratorio tan pronto como sea posible. Si el traslado va a demorarse, deberemos conservarla en frigorífico.

o

Transporte. El transporte de este tipo de muestra al laboratorio se realizará según lo establecido en las normas generales para el transporte de muestras, no siendo necesaria ninguna medida especial.

El personal encargado de la obtención de este tipo de muestra es el auxiliar de enfermería.

Recogida de muestra de orina para urocultivo El objetivo de la obtención de esta muestra es el estudio microbiológico de la misma con absoluta asepsia para evitar su contaminación y obstaculizar el estudio. Puede realizarse recogiendo la parte media de la micción o directamente de la sonda vesical, cuando el paciente está sondado.

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Material necesario. o

Bote o frasco estéril para recoger la muestra.

o

Etiquetas identificadoras o etiquetas y rotulador indeleble.

o


o

Equipo para realizar el aseo de los genitales del paciente: cuña, agua, jabón o suero fisiológico y gasas estériles.

o

Equipo para obtener la muestra con el paciente sondado: pinzas de hemostasia, jeringa, aguja, antiséptico y gasas.

Procedimiento. o

Explicar al paciente lo que se le va a hacer pidiendo su colaboración.

o

Lavarnos las manos y colocarnos los guantes.

o

Si el paciente puede levantarse, se le explicará cómo debe asearse los genitales (mejor sin jabón y secándose con gasas estériles) y se le pedirá que recoja la parte media de la micción (es decir, desechando la primera y última parte de la orina).

o

Si no puede levantarse y permanece encamado:

o

En primer lugar, proceder al lavado de los genitales en la cama.

Colocar la cuña o la botella y recoger la parte media de la micción en el frasco.

Cerrar inmediatamente el bote e identificarlo correctamente.

Retirar la cuña o la botella y limpiar al paciente

Recoger los materiales y dejar acomodado de nuevo al paciente en la cama.

Si el paciente tiene puesta una sonda vesical, la recogida debe hacerse directamente de la sonda:

Si es portador de un sistema cerrado, éstos traen una zona específica para punción.

Se pinza la sonda con una pinza de hemostasia durante unos minutos. Para su obtención, pincelar dicha zona con una solución antiséptica y

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aspirar unos 5 mililitros con una aguja estéril. Depositar la muestra en el frasco estéril. Etiquetar la muestra correctamente.

Si es un sistema abierto, pincelar con un antiséptico el lugar de punción, que suele estar próximo a la conexión con el sistema colector o fin de la sonda, y aspirar con aguja estéril. Se recoge la muestra introduciendo el tubo de vacío con su soporte en el frasco con la muestra y se empuja al fondo para perforarlo. La orina saldrá hacia el tubo debido al sistema de vacío.

Toma de muestra de un paciente sondado.

Para la obtención de esta muestra, en ambos casos debemos pinzar el sistema con unas pinzas unos 10-15 minutos antes para que se acumule la orina en el interior de la sonda y no caiga a la bolsa colectora.

Una vez obtenida la muestra: enviarla inmediatamente al laboratorio. En caso de que no sea posible, guardar en el frigorífico durante un máximo de 24 h desde la obtención de la muestra.



Medidas especiales de conservación y transporte Conservación La orina debe llegar al laboratorio en el plazo de una hora. Cuando esto no sea posible, debe refrigerarse a 4ºC durante un tiempo máximo de 24 horas.

Transporte El transporte de la muestra al laboratorio se realizará según los criterios recogidos en las normas generales establecidas para este fin, sin ser necesaria ninguna medida específica adicional. El personal encargado de la obtención de este tipo de muestra es el auxiliar de enfermería.

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No obstante, cuando el paciente está sondado y se requiere que la muestra sea estéril, lo realiza el personal de enfermería, generalmente.

Recogida de muestra orina en un tiempo determinado. Lo habitual es que el tiempo del que se solicita la muestra de orina sea de 12 ó de 24 horas.

Orina de 24 horas o

Se le pide al paciente que deseche la primera orina de la mañana y, desde ese momento, ha de recoger toda la hora en las horas sucesivas, hasta la 1ª micción de la mañana siguiente incluida: total: 24 h.

Orina de 12 horas o

Se inicia la recogida a las 8 pm del día indicado, recogiendo la orina de las horas sucesivas, hasta las 8 am del día siguiente: total: 12 h desde la 1ª micción.

En ambos casos: se debe medir la cantidad de orina total analizada (diuresis) y se envía al laboratorio el dato, así como una muestra de la orina total (es decir, mezclada la orina de todas las micciones). Todas las muestras han de ser guardadas en la nevera hasta su envío al laboratorio.

Material necesario.

Recipientes graduados de boca ancha y gran capacidad.


Procedimiento.

Explicar al paciente el procedimiento a realizar y solicitar su colaboración para que guarde la orina y la deposite en los recipientes graduados para medir el volumen.

Si el análisis es de 24 horas, recoger la orina desde las ocho de la mañana de un día hasta las ocho de la mañana del día siguiente, desechando la primera de la mañana.

Se enviará a laboratorio sólo una muestra (que resulta de la mezcla de toda la orina recogida) pero indicando cuál ha sido el volumen total.

Si el análisis es de 12 horas, se comenzará a recoger la orina desde las ocho de la tarde hasta las ocho de la mañana del día siguiente, según el mismo procedimiento anterior.

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El material siempre se dejará recogido y la habitación ordenada.

Si el paciente está inconsciente, estará sondado y la medida de diuresis se hará cuantificando el volumen de orina en la bolsa colectora.


Medidas especiales de conservación y transporte Este tipo de muestra no precisa medidas especiales de conservación o transporte, salvo guardar la muestra en frigorífico hasta su traslado al laboratorio. Todas las muestras de orinas deben conservarse bien refrigeradas a 4ºC, o bien añadiendo algún tipo de conservante, para evitar la profileración de determinado tipo de organismos. Pero lo ideal es analizarla en las 2 h siguientes a su recogida. Si se van a analizar sustancias sensibles a la luz, es decir, fotosensibles, se mantendrán las muestras en frascos de color ámbar, o bien protegida por cualquier otro medio. En caso de urocultivo, puede mantenerse la muestra refrigerada hasta 24 h sin que se afecte la flora bacteriana. Pero no debe traspasarse ese tiempo. Si se transfiere a un tubo de transporte que contenga un conservante bacteriostático, en cuyo caso no precisa refrigeración. La recogida de muestras de orina en un tiempo determinado la realiza el AE.

Muestras de sangre. El objetivo de los análisis de sangre es realizar el estudio de todos sus componentes para el diagnóstico de enfermedades hematológicas o que afectan a otros órganos, sistemas y funciones del organismo. Las pruebas que con más frecuencia se demandan son: •

Análisis de rutina o hemograma básico.

•

Análisis bioquímico.

•

Pruebas de coagulación.

•

Estudios hormonales.

•

Hemocultivo, etc.

Dependiendo del tipo de análisis que el médico solicite, las muestras de sangre pueden obtenerse a partir de sangre capilar, venosa o arterial. Es una extracción.

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Como norma general, se solicita muestra de sangre capilar cuando se requiere poca cantidad de ésta para el análisis (determinación de cifras de glucemia, coagulación,...). La muestra de sangre arterial se obtiene cuando se quiere determinar la concentración de gases respiratorios (oxígeno, carbónico,...) Finalmente, la muestra de sangre venosa es la requerida en la mayoría de los análisis. Con ella se pueden microbiológicos,...

realizar

estudios

hematológicos,

bioquímicos,

inmunológicos,

Generalmente, la obtención de las muestras de sangre las realiza ATS/DUE, pero el AE debe conocer todas estas técnicas, ya que es responsable de:

Preparar todo el material necesario.

Preparar al paciente.

Enviar las muestras o llevarlas personalmente al laboratorio.

Obtención o Extracción de muestra de sangre capilar. Se lleva a cabo cuando hay que realizar estudios analíticos que requieren poca cantidad de sangre, como es el caso de: valor hematocrito, coagulación, fórmulas leucocitarias, grupos sanguíneos, glucemia, etc. Los lugares de punción son, preferiblemente, el pulpejo de los dedos y la planta del pie o el lóbulo de la oreja. La muestra de sangre obtenida es siempre una pequeña cantidad. Éste es el método de elección en niños pequeños. La extracción de este tipo de muestra la realiza el personal de enfermería y el personal auxiliar asiste en el procedimiento.

Técnica de punción capilar en pie y mano.

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Material necesario.

Lanceta estéril o dispositivos de punción. (P.ej. lanceta de Frankel o lanceta desechable).


Gasas.

Povidona yodada u otro antiséptico.

Recipiente indicado para la recogida de la muestra de sangre: tubos para este tipo de muestras o capilares de cristal heparinizados o portaobjetos de cristal.

Plastilina (método antiguo. Lo idóneo es tubo con cierre hermético).

Procedimiento.

Explicar al paciente el procedimiento a realizar, pidiéndole su colaboración si se precisa.

Lavarnos las manos y ponernos los guantes.

Elegir la zona de punción y dar un pequeño masaje sobre ella para calentarla y aumentar su vascularización. Niños hasta los 4 años: en la planta del pie. Adultos: en el lóbulo de la oreja (cara lateral) o en el pulpejo del dedo de la mano.

Limpiar la zona donde se va a realizar la punción con antiséptico (desinfectar) y dejar secar.

Con la lanceta, de forma perpendicular a la zona elegida, efectuar la punción con un movimiento seco intentando profundizar unos 2-3 milímetros. Realizarlo de forma rápida y con un solo movimiento, de tal forma que la lanceta o instrumento utilizado esté perpendicular a la piel (de la zona de punción).

Desechar las primeras gotas y recoger el resto llenando el recipiente o capilar de cristal, hasta las 2/3 partes.

Tapar el capilar con plastilina y enviarlo al laboratorio.

Presionar con algodón la zona de punción para hacer hemostasia; es decir, para provocar el cese del sangrado.

Recoger todo el material y desecharlo en contenedores específicos.

Dejar acomodado al paciente.

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Anotar el procedimiento realizado en la hoja de enfermería y las incidencias si las hubiera.

Medidas especiales de conservación y transporte. Este tipo de muestra no requiere de medidas especiales de conservación o transporte. El personal auxiliar asiste en este procedimiento, si bien no lo realiza por sí mismo.

Obtención de muestra de sangre arterial El análisis de la sangre arterial se realiza para el estudio del estado ácido-base y la concentración de los gases respiratorios (oxígeno y dióxido de carbono) y se conoce con el nombre de gasometría arterial (GSA). El sitio de abordaje, generalmente, es la arteria radial a la altura del antebrazo o en la cubital, aunque también puede realizarse en la arteria braquial o en la femoral.

Procedimiento de extracción de sangre arterial.

Material necesario.

Guantes estériles.

Gasas estériles.

Esparadrapo hipoalergénico.

Jeringa de gasometría heparinizada (la heparina es sustancia anticoagulante) y agujas de diferentes tamaños.

Solución anestésica y antiséptica (povidona yodada).

Procedimiento.

Explicar al paciente el procedimiento (éste es bastante doloroso) y solicitar su colaboración.

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Localizar la arteria por palpación de su pulso.

Aplicar antiséptico en la zona y dejarla secar (es decir, desinfectar).

Aplicar el anestésico y esperar unos segundos.

Palpar de nuevo la arteria, pero esta vez la inmovilizamos entre nuestros dedos índice y medio (esto es, “fijar la zona”).

Realizar la punción en un ángulo de 35º y profundizar 1 a 2 cm. La sangre pasará a la jeringa casi sin aspirar impulsada por la propia presión arterial. Dos mililitros de sangre son suficientes para esta determinación. Hay que evitar que entre aire en la jeringa, por lo que la aspiración se realizará suavemente. La cantidad usual es de 2 a 4 ml de sangre.

Retirar la aguja y presionar fuertemente sobre la zona para hacer hemostasia durante unos minutos. Las punciones sobre arteria tienden a sangrar más que las que se realizan en vena porque la presión arterial es mayor que la venosa.

Recoger el material y acomodar al paciente.


Anotar el procedimiento en la hoja de enfermería, así como las posibles incidencias.

Medidas especiales de conservación y transporte. Conservación. La jeringa que se ha utilizado para la extracción se sella con un tapón de goma y ha de ser enviada al laboratorio RÁPIDAMENTE.

Transporte. El transporte al laboratorio se realizará con la mayor rapidez posible. El personal auxiliar asistirá durante la realización de este procedimiento.

Obtención o Extracción de muestra de sangre venosa Se lleva a cabo cuando hay que realizar estudios analíticos específicos: hematológicos, bioquímicos, microbiológicos e inmunológicos.

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La extracción de esta muestra suele hacerse en las venas de la flexura del codo (cefálica, mediana y basílica), aunque puede realizarse también en venas de la mano, antebrazo, piernas (safena interna), pie, etc. Si la analítica es reglada, es decir, sin carácter de urgencia, la extracción se realiza con el paciente en ayunas (diez-doce horas antes). A veces es necesaria una dieta especial y/o suspender la administración de determinados medicamentos.

Técnica de extracción de sangre venosa.

Extracción con aguja y jeringa. Material.

Compresor.

Gasas estériles o algodón.

Antiséptico (povidona yodada) y esparadrapo hipoalergénico.


Jeringas y agujas desechables.

Procedimiento.

Explicar al paciente el procedimiento y solicitar su colaboración.


Descubrir el brazo sobre el que se va a realizar la punción y apoyarlo sobre una superficie dura.

Poner el compresor unos centímetros por arriba de la flexura del codo y pedir al paciente que abra y cierre la mano enérgicamente 3 ó 4 veces. Si la zona elegida es alguna de las otras que hemos mencionado, el compresor lo colocaremos unos centímetros por encima de esa zona.

Palpar la vena (a diferencia de las arterias, las venas no tienen pulso) y aplicar povidona.

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Perforar la piel con un ángulo de 45º y el bisel de la aguja hacia arriba, aspirar con el émbolo de la jeringa y obtener la muestra.

Retirar la aguja y hacer compresión sobre la zona, que se cubrirá con algodón y esparadrapo.

Repartir la sangre de la jeringa entre los tubos que deben estar correctamente identificados con los datos del paciente y enviarlos al laboratorio.



Anotar el procedimiento en la hoja de enfermería.

Sistema de extracción al vacío. Material. o

Sistema de vacío: consta de los siguientes elementos: o

Un soporte (cuerpo), que lleva un adaptador que sustituye al cuerpo de la jeringa.

o

Doble aguja con una rosca central. La aguja que queda dentro del sistema lleva una funda retráctil de goma.

o

Tubos herméticos (cerrados al vacío). Deben estar debidamente etiquetados.

o

El resto del material es el mismo que para la extracción anterior de sangre.

Procedimiento o

Explicar al paciente lo que se le va a hacer, pidiéndole su colaboración.

o

Lavarse las manos y ponerse los guantes.

o

Colocar al paciente y seguir el mismo procedimiento que en la extracción normal.

o

Para realizar la punción: la aguja se coloca en el soporte. Una vez realizada la punción se introduce el tubo dentro del soporte y se presiona contra la aguja interna para perforar el tapón. La sangre fluirá inmediatamente hacia el interior del tubo.

o

Cuando se llena el tubo, se retira sin quitar la aguja de la vena.

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o

Esta maniobra se repite las veces que sea necesario, dependiendo de los tubos que haya que llenar.

o

Al finalizar, retirar la aguja y comprimir la zona con algodón.

El auxiliar asiste procedimiento.

al

personal

de

enfermería

durante

la

realización

de

este

Obtención de sangre con sistema de extracción: a) tubo hermético al que se le ha realizado el vacío b) enrosque de la aguja en el adaptador; c) llenado del tubo.

Hemocultivo. Existe un análisis microbiológico de la sangre que se llama hemocultivo y que sirve para estudiar si existe algún germen en la sangre que sea el responsable de un determinado proceso infeccioso. Para ello, se aislan en la sangre, partiendo de un medio de cultivo, las bacterias aerobias o anaerobias causantes de la enfermedad. La toma de muestra debe realizarse cuando el paciente se encuentra en un pico febril de la enfermedad. El procedimiento para extraer sangre venosa para hemocultivo es el mismo que para una analítica convencional, pero difiere en los envases o recipientes, que en vez de ser tubos son frascos de mayor tamaño y se extraen de dos en dos; es decir, una muestra para hemocultivo siempre está compuesta por dos frascos: uno para el crecimiento de gérmenes aerobios y otro para el crecimiento de gérmenes anaerobios. La vena elegida para extraer la muestra para hemocultivo no debe tener conectada ningún catéter venoso. Si se va a extraer más sangre parar otras pruebas: la 1ª sangre extraída es la destinada al hemocultivo. Una vez hecha la extracción para el primero de los frascos, hay que cambiar la aguja para llenar el segundo.

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Es necesario realizar 3 extracciones: en 3 venas diferentes, con un intervalo de 15 a 30 minutos entre cada una de ellas. Durante la realización de este procedimiento, el auxiliar asiste al personal de enfermería.

Material: o

Material de extracción y frascos con medios de cultivo para aerobios y anaerobios.

Procedimiento: o

Realizar la punción de la vena para obtener la muestra de sangre, siguiendo el protocolo establecido en la extracción venosa normal.

o

Preparar los frascos (recipientes) con los medios de cultivo.

o

Desenroscar la cantidad de sangre que sea necesaria en cada frasco, pinchando el tapón de goma, a la vez que se sujeta el émbolo de la jeringa.

o

Tapar de nuevo los frascos con los tapones exteriores.

o

Colocar las etiquetas con los datos que sean necesarios debidamente identificados.

o

Enviar al laboratorio lo antes posible.

Medidas especiales de conservación y transporte Conservación. Las muestras de sangre venosa para hemocultivo han de ser enviadas directamente al laboratorio. Si esto no fuese posible, se mantendrán en una estufa de cultivo a 36-37ºC o a temperatura ambiente (18-25ºC), pero NUNCA se refrigerarán ni se congelarán. Las muestras de plasma y suero pueden conservarse entre 4-6ºC, una vez que se les ha separado de los elementos formes. Por debajo de -18ºC (mediante aparatos congeladores), para muestras de suero y plasma sin elementos formes. Transporte. Para el transporte, se atenderá a las medidas generales para muestras biológicas.

Muestras de heces Las heces son los productos de desecho que se originan en el tubo digestivo. El colon conduce estos desechos hasta el recto para eliminarlos al exterior a través del ano. Están

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MUESTRAS


compuestos por restos de alimentos, minerales, pigmentos biliares, microorganismos (gérmenes saprofitos), etc. La muestra de heces se puede solicitar para distintos fines: investigar si hay crecimiento de algún parásito, gérmenes, existencia de sangre oculta,... La recogida de muestras de heces se suele llevar a cabo para: o

Determinar la presencia de sangre (hemorragias ocultas), parásitos, principios inmediatos o bien otros componentes.

o

Realizar un coprocultivo (estudio microbiológico de las heces).

Normas que deberían respetarse antes de una recogida de heces: o

No comer en los 3 días anteriores y durante el tiempo que dure la recogida: embutidos, picantes, frutas, rábanos o tomates.

o

No es conveniente tomar medicamentos que contengan ácido acetilsalicílico.

o

No tomar Vitamina C o alimentos que la contengan (cítricos, p.ej.).

o

Es recomendable una dieta rica en residuos (verduras, ensaladas, pan integral, …).

Características de las heces: Color Normalmente presentan un color amarillento en el lactante y pardusco (marrón) en el adulto. Este color puede variar en función de los alimentos ingeridos y en función de si existen enfermedades en el paciente. Si aumenta la cantidad de pigmentos biliares, las heces se van a oscurecer; si disminuyen serán más claras. o

Heces marrones: situación normal.

o

Heces blancas: sospecha de obstrucción biliar.

o

Heces negras: sospecha de sangrado del tracto superior gastrointestinal.

o

Heces rojas: sospecha de sangrado del tracto inferior gastrointestinal.

o

Heces pálidas: dieta pobre en carnes.

- 22 –


MUESTRAS o


Heces verdes: sospecha de infección intestinal.

Consistencia Normalmente son de consistencia blanda y pastosa, dependiendo del tiempo que permanecen en el colon. Cuanto más lento es el tránsito intestinal, mayor será la consistencia, pues se produce una mayor absorción de agua. o

Heces formadas, blandas, semisólidas: heces normales.

o

Heces duras y secas: sospecha de deshidratación, de falta de fibra en la dieta, etc.

o

Heces líquidas: diarrea, aumento del peristaltismo intestinal.

Cantidad Depende directamente del tipo de dieta que se ingiera. P. ej: si la alimentación es rica en carnes y pescados, las heces son más escasas. Pero si es una dieta rica en frutas y verduras (residuos), serán abundantes. Olor Si tienen un olor muy penetrante hay que sospechar infección o presencia de sangre. Composición Puede variar debido a las circunstancias siguientes: Presencia de pus o de moco, debido a un proceso infeccioso o inflamatorio. Presencia de grasas en exceso (esteatorrea). Presencia de microorganismos no habituales o patológicos (Salmonella, Shigella, etc.). Presencia de sangre (melenas).

Obtención de muestras de heces. Material necesario. o


o

Cuña.

o

Frasco contenedor de la muestra debidamente etiquetado.

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MUESTRAS


o

Depresor lingual o espátula de madera para la recogida de la muestra, si el frasco no lleva cucharilla incorporada.

o

Equipo de aseo para la zona ano-genital (gasas, agua, jabón o suero fisiológico y batea).

Procedimiento. o


o


o

Colocar la cuña al paciente y pedirle que defeque en ella: no debe orinar en el mismo recipiente.

o

Con el depresor o la cucharilla del frasco, si la tiene, coger una muestra e introducirla en el frasco. Cerrarlo y mandarlo al laboratorio correctamente etiquetado, de forma inmediata.

o

Acomodar y asear al paciente, dejándole debidamente instalado.

o

Recoger los materiales.

o


o

Anotar el procedimiento en la hoja de enfermería y las posibles incidencias.

Medidas especiales de conservación y transporte. Conservación. Si la toma es para un coprocultivo, ésta deberá depositarse en un tubo de ensayo estéril y enviarse directamente al laboratorio para su análisis. Esta técnica se hace en condiciones de máxima esterilidad: se recoge con una torunda estéril y se deposita en un recipiente también estéril. A continuación, se envía directamente al laboratorio para su análisis. En niños menores de 2 años, la muestra se recoge con una bolsa que se adhiere a la zona anal del niño, para evitar riesgos de contaminación. Las muestras pueden mantenerse en el frigorífico a 4-6ºC hasta su análisis, pero es conveniente enviarlas antes de 2 ó 3 h. Transporte. Para el transporte de la muestra, se atenderá a las medidas generales. El AE es el encargado de realizar la recogida de este tipo de muestra.

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MUESTRAS


Toma de muestras para el estudio de parásitos. Los parásitos son microorganismos que pueden vivir dentro fuera del organismo de una persona alimentándose de sus nutrientes. Procedimiento: o

Recoger la muestra durante 3 días alternos, en envases estériles con cucharilla, siguiendo el procedimiento antes descrito.

o

Identificar las muestras debidamente.

o

Conservarla a temperatura ambiente hasta su transporte al laboratorio.

o

Procesar la muestra antes de que transcurran 24 h.

Muestras de vómitos Aunque no excesivamente frecuentes, se solicitan en alguna ocasión para valorar la existencia de pequeñas hemorragias, infecciones, etc. y para el estudio de determinadas alteraciones de las funciones del aparato digestivo. El vómito es la expulsión brusca del contenido del estómago a través de la cavidad bucal hacia el exterior. Es un acto reflejo que se produce como consecuencia del estímulo del bulbo raquídeo (lugar donde se encuentra el centro estimulador del vómito), que provoca la relajación del esófago y del esfínter del cardias junto con la contracción de la región pilórica. Puede deberse a causas digestivas (funcionales u orgánicas) o no digestivas (trastornos que afectan a otras zonas del organismo). Cuando se presenta el vómito, el personal de enfermería debe observar las características que se presentan en relación con: o

El olor y la cantidad (determina el balance hidro-electrolítico).

o

Momento y frecuencia con que aparece.

o

Forma de producirse y contenido.

Teniendo en cuenta el contenido del vómito, puede ser: o

Alimenticio: contiene alimentos en distinto grado de digestión.

o

Acuoso: contiene jugo gástrico.

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MUESTRAS


o

Bilioso: contiene bilis.

o

Purulento: contiene pus precedente del aparato respiratorio o digestivo.

o

Hemático: contiene sangre procedente del aparato digestivo. Si la sangre es roja se trata de sangre no digerida, y si es de color negro es sangre digerida.

o

Fecaloide: contiene materias fecales que proceden del intestino.

Por su olor: o

De olor putrefacto: puede existir una estenosis de píloro.

o

De olor nauseabundo: puede indicar presencia de sangre (hematemesis).

Por su horario: o

Matutinos: por las mañanas.

o

Postpandriales: después de las comidas.

Tipos de vómitos: A) Vómitos reflejos: 2 grupos: gástricos (proceden del estómago: gastritis aguda, cáncer gástrico, etc.) y extragástricos (apendicitis, hepatopatías, patología biliar, etc.). B) Vómitos centrales: causados por tumores del cráneo, histéricos, etc.

Obtención de muestras de vómitos. Material necesario. o


o

Batea.

o

Gasas o pañuelos desechables y toallas.

o

Frasco o recipiente estéril para la recogida de la muestra.

o

Etiquetas de identificación o rotulador indeleble.

Procedimiento o


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MUESTRAS


o


o

Si el enfermo está consciente y colabora, acercar una batea y recoger el vómito en ella. Permaneceremos a su lado por si nos necesita.

o

Si está incosciente, colocarlo en decúbito lateral (PLS), para evitar que haga alguna aspiración y que se ahogue con su vómito. Colocar la batea cerca de la boca del paciente y recoger la mayor cantidad de muestra posible, para facilitarle al médico la valoración de sus características.

o

Pasar la muestra al recipiente estéril debidamente etiquetado y enviarlo al laboratorio.

o

Asear y acomodar al paciente. Si el enfermo lo pide y está permitido, se le enjuaga la boca para eliminar los restos del vómito.

o

Recoger todo el material y limpiar todo aquello que sea necesario.

o


o

Anotar el procedimiento en la hoja de enfermería y todas las incidencias observadas.

Para proceder a la recogida de la muestra, esperaremos a que aparezca un episodio de vómito en el paciente; en ningún caso intentaremos provocarlo.

Medidas especiales de conservación y transporte No habrán de tomarse medidas especiales para la conservación y transporte de la muestra. La recogida de este tipo de muestra es labor propia del AE.

Muestras de esputo Llamamos esputo a la expulsión con la tos del contenido bronquial. Son mucosidades, u otro tipo de sustancias o elementos, procedentes de las vías respiratorias inferiores que se expulsan al exterior gracias al acto reflejo de la tos. Su análisis aporta gran cantidad de datos al clínico, siendo una muestra solicitada con bastante frecuencia. Según el aspecto que presentan los esputos, pueden ser de diferentes tipos: o

Normal: aspecto acuoso y claro. Puede presentar una pequeña opacidad por el material celular en suspensión.

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MUESTRAS


o

Mucoso: de color blanquecino, con gran cantidad de moco, que hace que sea muy adherente.

o

Purulento: de color amarillo-verdoso, debido a su contenido en pus.

o

Mucopurulento: de color amarillo-verdoso, lleva en su composición moco o pus.

o

Seroso: de color blanco rosado, con frecuencia abundante y de poca consistencia. Líquido.

o

Hemático o sanguinolento: contiene sangre que le da mayor o menor coloración, en función de la cantidad o de las características de la sangre.

o

Puede combinarse tipos de esputos: mucopurulento; seroso purulento, sanguinolento y purulento (tuberculosis); seroso y sanguinolento (edema agudo de pulmón), etc.

Se pueden realizar dos tipos de análisis del esputo: o

Análisis macroscópico: cuando analizamos la cantidad, olor, aspecto y consistencia.

o

Análisis microscópico: cuando estudiamos la presencia de células, gérmenes, etc.

Es conveniente recoger esta muestra a primera hora de la mañana. Se debe explicar al paciente que no es igual esputo a saliva (sustancia involucrada en parte de la digestión, se encuentra en la cavidad bucal, producido por las glándulas salivales).

Obtención de muestras de esputo Material necesario. o


o

Toalla o gasas o pañuelos desechables.

o

Frasco o recipiente estéril de recogida.

o

Equipo de recogida de muestras y sistema de aspiración (sondas de aspiración) si el paciente está inconsciente, no colabora o porta traqueostomía.

o

Paño de campo estéril para pacientes traqueotomizados.

o

Etiquetas de identificación.

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MUESTRAS


Procedimiento. A) Si el paciente está consciente. o


o


o

Indicar al paciente que se enjuague la boca para evitar contaminación con gérmenes de la flora habitual de las vías respiratorias altas.

o

Pedirle que inspire profundamente entre 2 y 4 veces consecutivas y que, en la última, tosa con fuerza para expulsar el contenido bronquial (es decir, para liberar el esputo, teniendo en cuenta que no debe liberar saliva o secreciones nasales).

o

Acercar el frasco estéril pegándolo a la boca del paciente y recoger directamente la muestra en él.

o

Cerrar el frasco para evitar contaminaciones, etiquetarlo correctamente y enviarlo al laboratorio junto con el volante de petición.

o

Recoger todo el material utilizado, ordenar la habitación y acomodar al paciente.

o


o

Anotar el procedimiento en la hoja de enfermería y las incidencias observadas.

B) Si el paciente está inconsciente o es portador de traqueostomía. o

En estos casos se deberá usar un sistema de recolección por aspiración. Para ello:

o

Introducir la sonda del recolector por las fosas nasales o traqueostomía y conectarla al sistema de vacío.

o

Realizar la aspiración del esputo insertando en el sistema un tubo adecuado de recogida y las secreciones quedarán en el frasco contenedor del recolector.

o

Desconectar la sonda cuando se obtiene la muestra, cerrar el frasco y enviarlo al laboratorio correctamente identificado.

C) Si el paciente es portador de traqueostomía. o


o


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MUESTRAS


o

Colocar el paño de campo estéril alrededor del orificio de traqueotomía.

o

Introducir la sonda de aspiración en el orificio y aspirar varias veces.

o

Recoger la muestra, cerrar y etiquetar el recipiente ocn los datos debidamente cumplimentados.

o

Enviar al laboratorio.

o


o

Quitarse los guantes y lavarse las manos.

La muestra de estupo también puede obtenerse por broncoscopia (La broncoscopia es una prueba diagnóstica que permite visualizar la vía respiratoria (laringe, tráquea y bronquios de mayor tamaño) y recoger muestras de secreciones respiratorias, tejido bronquial o pulmonar o ganglios del mediastino. En ocasiones puede tener un fin terapéutico).

Medidas especiales de conservación y transporte Para este tipo de muestra se atenderán a las medidas generales de conservación y transporte. Conviene que sean enviadas de forma inmediata al laboratorio. Si no es posible, se mantenfrán refrigeradas como máximo 2 ó 3 h a 4-6ºC. En el paciente consciente, esta muestra la obtiene el personal AE. En casos de traqueostomía o paciente inconsciente, la obtiene el ATS/DUE, que estará asistido por el auxiliar. Este último preparará el material, lo ofrecerá al personal de enfermería y, finalmente, recogerá.

Muestras de líquido cefalorraquídeo (LCR) El LCR es un líquido de color transparente (parecido a la linfa), que se produce continuamente en los plexos coroideos vasculares. Circula por los ventrículos cerebrales y entra en los espacios subaracnoideos, tanto del cerebro como de la médula espinal, para filtrarse y regresar al sistema venoso. Su volumen total es de unos 100 a 150 ml, y su presión oscila entre los 100-200 mm de agua. Su función principal es proteger al encéfalo y además sirve para disminuir o paliar los daños por traumatismos de cabeza o cuello. Es decir, el LCR es el líquido que llena los ventrículos cerebrales y los espacios subaracnoideos del cerebro y de la médula espinal, de color transparente. Si hay presencia de sangre en el LCR tendrá un color rojizo, y si hay infección, aparecerá de aspecto turbio.

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MUESTRAS


Esta toma la realiza exclusivamente el personal médico al ser una técnica que conlleva riesgo para el paciente. Esta técnica se denomina “punción lumbar, espinal o raquídea”. Se utiliza tanto para diagnosticar como para tratar algunas enfermedades. Consiste en la extracción de LCR que se encuentra en el espacio subaracnoideo del canal espinal. La técnica se denomina punción lumbar y se realiza a la altura del espacio intervertebral de la 3ª y 4ª vértebra lumbar. El paciente debe colocarse en decúbito lateral, al borde de la cama, con las piernas y la cabeza muy flexionadas (posición fetal). Es una técnica estéril. Conlleva riesgos por lo que no es una prueba rutinaria. Cuando se decide realizar esta prueba: a) Con fines diagnósticos: cuando se pretende investigar los componenetes del LCR o medir su presión. b) Con fines terapéuticos: cuando lo que se pretende es tratar de disminuir la presión existente, introducir aire o ejecutar la raquianestesia (Raquianestesia: (Del griego rakhis, y de anestesia). Sinónimo: ANESTESIA RAQUÍDEA. Método de anestesia parcial consistente en inyectar mediante punción lumbar, en los espacios subaracnoideos, una sustancia que, al actuar directamente sobre la médula, provoca la anestesia de las regiones inervadas por los nervios subyacentes. Puede emplearse para aliviar los dolores de los parapléjicos (método de Bier) o para producir la insensibilidad para una intervención quirúrgica (procedimiento de Tuffier)).

Obtención de muestra de LCR Material necesario.

Trocar

o

Guantes estériles.

o

Paños quirúrgicos, de los cuales uno de ellos ha de ser fenestrado.

o

Solución antiséptica y gasas estériles.

o

Trócar para realizar la punción.

o

Anestésico local y agujas y jeringas para su administración.

o

Recipiente estéril para la recogida de la muestra.

o

Trocar para realizar la punción.

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MUESTRAS


Generalmente, las muestras de LCR se recogen en 3 tubos estériles con tapón de rosca: o

el 1º para el estudio bioquímico.

o

el 2º para el estudio microbiológico, que es el líquido más turbio.

o

el 3º para la investigación de células.

Procedimiento

o


o


o

Colocar al paciente en DL, en posición fetal; de esta forma, se abren más los espacios intervertebrales y es más fácil la punción. La postura es un DL con las rodillas flexionadas hacia adelante y la cabeza también flexionada y colocada lo más cerca posible de las rodillas: con esta postura se consigue que la columna esté en hiperflexión.

o

Una vez identificada la zona, se desinfecta con antiséptico.

o

Colocarnos los guantes estériles y extender el paño quirúrgico creando un pequeño campo completamente estéril. El paño fenestrado se coloca en la zona de punción.

o

Desinfectar la zona con el antiséptico (hasta la cresta ilíaca) y administrar el anestésico local.

o

Realizar la punción entre las vértebras lumbares 3ª, 4ª ó 5ª (espacio subaracnoideo). La técnica más frecuente es realizar la punción entre L3 y L4.

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MUESTRAS


o

El médico realizará la punción con el trocar y, al retirar el fiador, que es una guía interna que lleva el trocar, saldrá el LCR. Generalmente, el sistema de punción está provisto de un manómetro que mide la presión inicial del LCR.

o

Posteriormente, recogerá la muestra en el frasco estéril, teniendo cuidado de no tocar el extremo de la aguja de punción.

o

El frasco debidamente identificado, la enviará al laboratorio lo más rápido posible.

o

Retirará el trocar y limpiará la zona, presionando con una gasa estéril.

o

Cubrir con un apósito.

o

Recoger el material y dejar al paciente en decúbito supino y sin levantar la cabecera de la cama durante, al menos, 2 ó 3 horas, ya que es frecuente la aparición de cefalea tras la punción lumbar. Salvo que el médico indique otra cosa.

o

Anotar el procedimiento e incidencias en la hoja de enfermería.

Medidas especiales de conservación y transporte. Conservación. Es importante que el envío de la muestra al laboratorio se haga con rapidez, sobre todos si se sospecha meningitis. Si esto no es posible, la toma se conservará en una estufa a 35-37ºC. Si no se dispone de estufas, se mantendrá a temperatura ambiente. En las lesiones en las que se sospecha la presencia de anaerobios, la muestra debe recogerse por aspiración con jeringa; en estos casos, NUNCA deben refrigerarse, porque las bacterias anaerobias son muy sensibles a las temperaturas bajas. Transporte. El transporte ha de realizarse con rapidez. Tanto el personal auxiliar como el de enfermería asistirán al médico en la punción y evitarán en todo momento que el paciente se mueva durante la misma, ya que eso entraña grandes riesgos para él.

Muestras de líquido torácico Se obtiene mediante la punción pleural o aspiración torácica o toracocentesis. Consiste en la evacuación de sustancias extrañas (sangre, pus, aire, etc.) del espacio interpleural. Se realiza la punción para realizar el drenaje, conectándolo al sistema de aspiración conocido como Pleur-Evac.

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MUESTRAS


Material necesario o

Hule para proteger la cama.

o

Paños estériles fenestrados y algodones estériles.

o

Jeringas con anestésico local (p.ej.: solución al 1% de procaína o novocaína).

o

Guantes estériles.

o

Apósitos estériles, tela adhesiva o esparadrapo.

o

Sistema de aspiración.

o

Agujas de diferentes tamaños y bisel corto para no perforar el pulmón y agujas delgadas par exudados serosos o, en lugar de todo esto, catéter de plástico, que pasa a través de una aguja y reduce el riesgo de punción pulmonar.

o

Pinzas estériles.

Procedimiento o

Informar al paciente y pedirle su colaboración.

o

Colocar al paciente en DP o en DL. Ha de estar acostado sobre el lado afectado. El brazo de dicho lado se colocará sobre la cabeza o hacia adelante. Sentado al lado de la cama con los pies apoyados sobre un cojín colocado en el respaldo de la silla.

o

El paciente debe estar abrigado para evitar enfriamientos. Sólo se descubrirá la zona necesaria para la punción.

o

Comprobar el aparato de aspiración, colocando el tubo que va a ser conectado con la aguja de aspiración dentro de un vaso de agua y abrir la llave de paso perteneciente a esta rama. Si el agua entra rápidamente en el frasco, también lo hará el líquido torácico.

o

Limpiar y desinfectar la piel en la zona de la punción con una gasa estéril impregnada en antiséptico.

o

Anestesiar el punto de punción con anestésico local.

o

Realizar la punción: la aguja se inserta en el punto medio entre 2 costillas para evitarl los vasos intercostales y durante la inspiración, cuando los espacios son más anchos.

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MUESTRAS


o

El ATS/DUE enseñará al paciente a no moverse, no toser, mientras la aguja está en la pared torácica. En caso de que no pueda evitarse la tos, el cirujano torácico, que es el que habitualmente realiza la punción, retirará temporalmente la aguja.

o

La aguja estará conectada a un adaptador con llave de 3 pasos para evitar la entrada de aire en la cavidad pleural, cerrando la llave. Adaptador que se conectará al sistema de succión.

o

Cuando se abre la llave de paso, el líquido debe afluir al frasco de vacío.

o

Si se desea una muestra no contaminada: ha de obtenerse mediante una jeringa y depositarla en un recipiente estéril debidamente identificado.

o

Se debe observar cuidadosamente el estado del paciente durante todo el tratamiento (color, pulso, respiración). Hay que vigilar el esputo: si son sanguinolentos pueden indicar lesión del tejido pulmonar. También hay que atender a posibles complicaciones como hemorragias por lesión de los vasos intercostales, de la vena cava o del propio corazón, hipovolemia por pérdida de sustancia hemática y, como consecuencia, shock.

o

Anotación y registro del tratamiento: cantidad, color, tipo de líquido extraído, duración del tratamiento, síntomas aparecidos.

o

Anotación de las muestras obtenidas y el motivo por el que se envían al laboratorio.

o


Muestras de contenido gástrico–duodenal En ciertas enfermedades del aparato digestivo se requiere el análisis de muestras de contenido gástrico-duodenal. Para poder obtener muestras de este tipo es preciso que el paciente esté sondado. En los análisis gástricos no existen intervalos de normalidad estrictamente delimitados. Las muestras por sí solas tienen poco valor patológico, antes debe interpretarse según la historia del paciente y el resultado de otras pruebas. La aplicación de la gastroscopia (endoscopia gástrica), radiología, citología gástrica obtenida mediante biopsia, son mucho más útiles para establecer el diagnóstico de patología gástrica que mediante el análisis del jugo gástrico. Es una técnica no agresiva, pero la entubación (introducir la sonda por la nariz o por la boca) puede ser desagradable e incluso traumática para el paciente. Por todas sus limitaciones es una prueba muy poco utilizada actualmente.

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MUESTRAS


Obtención de muestras de contenidos gástrico-duodenal. Material necesario o

Todo el material necesario para un sondaje nasogástrico o nasoentérico (sondas, fonendoscopio, jeringa grande, lubricante, gasas estériles y batea).

o


o

Frascos estériles para las muestras.

Procedimiento o


o


o

Realizar el sondaje y comprobar la adecuada colocación de la sonda.

o

Aspirar contenido con una jeringa a través de la sonda, verterlo en el frasco estéril debidamente identificado, y enviarlo al laboratorio.

o

Retirar el sondaje.

o

Recoger todos los materiales y acomodar al paciente.

o


o


Medidas especiales de conservación y transporte El transporte y conservación de la muestra se hará inmediatamente, sobre todo si hay sospecha de tuberculosis. Si no es posible, ha de mantenerse a una Tª estable de 37º C. El personal auxiliar asistirá durante la realización del procedimiento. NOTA: el paciente debe permanecer en dieta absoluta, durante las 4 h siguientes a la finalización de la técnica.

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MUESTRAS


Muestras de líquido seminal Se solicitan generalmente para el estudio citológico o de la infertilidad en el varón o tras una vasectomía para comprobar si ésta ha sido eficaz. También tiene gran valor en el caso de violaciones. Se estudia la cantidad, forma, número y movilidad de los espermatozoides. La muestra se obtiene tras 2-3 días de abstinencia sexual. Generalmente, se recoge en domicilio (por masturbación o coito interrumpido), aunque también puede recogerse en el laboratorio (masturbación). Con el análisis del semen se determinan la movilidad, la morfología, el volumen del eyaculado y el recuento de espermetazoides.

Obtención de muestras de líquido seminal. Material necesario o

Frasco estéril y etiquetas para su identificación.

o

Material necesario para el aseo genital del paciente.

Procedimiento o

Explicar al paciente cómo debe realizar la recogida de la muestra. Se suele recomendar la recogida de la muestra después de 2 ó 3 días de abstinencia sexual.

o

Lavar los genitales.

o

Recoger la muestra en un frasco de apertura ancha.

o

Cerrar el frasco y etiquetarlo correctamente.

o

Lavar los genitales.

o

Llevar al laboratorio junto con la petición del análisis. No deben transcurrir más de 2 h desde el momento en que se recoge la muestra.

o

Realizar nuevamente la limpieza del aparato genital.

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MUESTRAS


Medidas especiales de conservación y transporte Debe enviarse al laboratorio antes de transcurridas 2 h desde su obtención.

Muestras de piel, pelo y uñas Se toman, generalmente, para el estudio de infecciones producidas por hongos.

Obtención de muestras de piel La muestra se toma raspando con lanceta o bisturí las escamas superficiales en la zona de la lesión. Se recoge en recipientes estériles. Se coloca la etiqueta con los datos debidamente cumplimentados. Enviar al laboratorio de microbiología para su análisis.

Obtención de muestras de pelo Se toma la muestra arrancando varios pelos de la zona lesionada con la ayuda de unas pinas. Recoger en recipientes estériles. Etiquetar con los datos necesarios y enviar al laboratorio.

Obtención de muestras de uñas Se toma la muestra raspando la zona afectada con una lanceta o bisturí. Si es posible, se corta algún fragmento de las uñas. Recoger en recipientes estériles, etiquetarlos correctamente y enviarlos al laboratorio.

Medidas especiales de conservación y transporte de este tipo de muestras Para el estudio de los hongos: pueden mantenerse a Tª ambiente durante varios días antes de su procesamiento. Pero hay que tener en cuenta que, a largo plazo, los efectos de la

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MUESTRAS


conservación de las muestras pueden alterarlas, por lo tanto, se modificarán los resultados de los análisis.

Muestras de exudados Llamamos exudado a líquido, células u otras sustancias que se exudan o expulsan lentamente a través de las membranas celulares por pequeños orificios en piel y mucosas. Son sustancias que salen de los vasos sanguíneos y se depositan en los tejidos de diferentes zonas del organismo. Se obtienen para realizar estudios microbiológicos, con el fin de determinar a presencia de microorganismos causantes de procesos infecciosos. Esta técnica es realizada por el médico o la ATS/DUE, pero el AE debe conocer las técnicas de recogida, pues colabora directamente con estos profesionales en su realización, así como en la preparación del material y del paciente y en el envío de las muestras al laboratorio.

Obtención de muestras de exudados. Material necesario o

Guantes estériles.

o

Gasas y apósitos.

o

Antiséptico.

o

Suero salino estéril.

o

Agua, solución jabonosa y toallas.

o

Etiquetas identificadoras.

o

Hisopo o torunda estéril con tubo de transporte.

Ejs de torundas para la recogida de muestras de exudados: a) Torunda abierta. b) Torunda cerrada.

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MUESTRAS


Procedimiento general o

El procedimiento para la obtención de muestras de exudado va a tener peculiaridades según el exudado en sí, pero la técnica es similar en todos los casos:

o

Explicar al paciente el procedimiento a realizar y solicitar su colaboración.

o


o

Realizar la higiene de la zona a analizar.

o

Colocar al paciente en la posición adecuada, abrir el tubo y pasar la torunda o hisopo suavemente, con movimientos circulares, por la zona elegida para realizar la muestra.

o

Colocar el hisopo dentro del tubo de transporte y cerrarlo correctamente.

o

Etiquetarlo correctamente y enviarlo al laboratorio lo antes posible.

o

Recoger materiales y ordenar la habitación, dejando cómodamente instalado al paciente.

o


Indicaciones específicas para la obtención de muestra de exudado nasal Para la toma de esta muestra se introduce el hisopo estéril a través de las fosas nasales rotándolo suavemente hasta llegar a la nasofaringe. También se puede tomar de las excreciones nasales. También se puede tomar la muestra con un asa estéril, raspando ligeramente en la zona de elección. En este caso, a continuación se procederá a su cultivo en los medios más apropiados para el análisis microbiológico. Colocar la torunda o hisopo en su tubo de transporte, identificándolo correctamente y enviarlo al laboratorio.

Indicaciones específicas para la obtención de muestra de exudado faríngeo Puede ser exudado de garganta, exudado o aspirado de nasofaringe o exudado de amígdalas.

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MUESTRAS


Se baja la lengua con un depresor y se pasa el hisopo por las amígdalas, la faringe o cualquier zona que presente signos de inflamación. Debe evitarse el contacto con la lengua, para ello la deprimiremos con un depresor lingual. También debe evitarse el contacto con las paredes de la boca. Colocar la torunda en su funda y enviarla inmediatamente y debidamente etiquetada al laboratorio. Si no es posible, mantenerla en la nevera a 4ºC.

Indicaciones específicas para la obtención de muestra de exudado conjuntival El hisopo estéril se humedece un poco con suero fisiológico y se frota suavemente la conjuntiva inferior desde el ángulo externo del ojo al interno. Se utilizará un hisopo distinto para cada ojo. Colocar la torunda en su funda y enviarla inmediatamente al laboratorio.

Indicaciones específicas para la obtención de muestra de exudado ótico Limpiar el canal auditivo previamente con un antiséptico. o

Si existe supuración ótica visible, ésta se toma utilizando un hisopo estéril distinto para cada oído.

o

Si no existe supuración ótica visible, la técnica debe ser realizada por el médico otorrinolaringólogo con técnica especial.

Obtenido el exudado, colocar el hisopo en su funda y enviarlo al laboratorio.

Indicaciones específicas para la obtención de muestra de exudado uretral En el varón debe realizarse por la mañana antes de la primera micción Si no es posible, han de transcurrir 4 h sin orinar. Se exprime la uretra para ver si hay secreción espontánea; si no es así, se introduce el hisopo por el conducto uretral y se hacen movimientos suaves de rotación en su interior. Si el paciente no colabora, se le coloca en DS y se introduce el hisopo en el conducto uretral, o bien se realiza exprimiendo la orina.

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MUESTRAS


Una vez obtenido, se introduce la torunda en su funda, se cierra y se envía al laboratorio directamente, debidamente etiquetado.

Indicaciones específicas para la obtención de muestra de exudado vaginal Para ello, la paciente debe estar en posición ginecológica. Con ayuda de un espéculo vaginal se toma la muestra frotando el hisopo dentro de la vagina, en la zona donde el exudado sea más abundante. La muestra se toma haciendo girar el hisopo o torunda. Una vez obtenido, se introduce la torunda en su funda, se cierra y se envía al laboratorio directamente, debidamente etiquetado. Si lo que se solicita es una citología vaginal, una vez obtenida la muestra, extendemos el exudado en un porta y se tiñe con los colorantes habituales.

Indicaciones específicas para la obtención de muestra de exudado de heridas La zona debe limpiarse previamente con solución salina estéril para evitar contaminaciones y ser desinfectada con un antiséptico. A continuación, el hisopo se introduce en la herida o en la UPP. Si la herida o úlcera es muy grande, la muestra se obtiene tocando en distintas zonas. Una vez obtenido, se introduce la torunda en su funda, se cierra y se envía al laboratorio directamente, debidamente etiquetado.

Medidas especiales de conservación y transporte Conviene que sean enviados inmediatamente al laboratorio. Si no es posible, pueden mantenerse refrigerados, durante 2 ó 3 h, sin pérdidas apreciables de microorganismos patógenos. El AE colabora en la obtención de estas muestras, aunque la técnica la realiza directamente el personal médico o de enfermería, en su mayoría.

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MUESTRAS


Resumen de la actuación del personal sanitario en la recogida de muestras de productos biológicos

TIPO DE MUESTRA

PERSONAL QUE RECOGE LA MUESTRA

Orina

AE

Sangre

ATS/DUE

Heces

AE

Vómitos

AE

PERSONAL COLABORADOR

AE

Paciente consciente: AE Esputo

AE Paciente inconsciente: ATS/DUE

LCR

Médico

ATS/DUE y AE

Contenido gástricoduodenal

ATES/DUE

AE

Líquido seminal

Paciente mismo

Exudados

Médico o ATS/DUE

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AE

MUESTRAS BIOLÓGICAS Y SU RECOGIDA

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