PRODUKSI NATA DE COCO

Download PRODUKSI NATA DE COCO. PENDAHULUAN. Nata adalah selulosa bakteri yang merupakan hasil sintesis dari gula oleh bakteri pembentuk nata, yaitu...

2 downloads 710 Views 183KB Size
LAPORAN PRAKTIKUM  MIKROB DAN POTENSINYA           

PRODUKSI NATA DE COCO                                         

KHAIRUL ANAM  P051090031/BTK                   

BIOTEKNOLOGI  SEKOLAH PASCASARJANA  INSTITUT PERTANIAN BOGOR  2010  0

PRODUKSI NATA DE COCO  PENDAHULUAN  Nata adalah selulosa bakteri yang merupakan hasil sintesis dari gula oleh bakteri pembentuk  nata,  yaitu  A.  xylinum.  Beberapa  galur  Acetobacter  menghasilkan  membran  bergelatin  yang  dinamakan  pellicle  pada  permukaan  suatu  kultur  cair.  Membran  ini  sama  dengan  “Nata  de  Coco”,  suatu  jenis  makanan  hasil  fermentasi  tradisional  di  Filipina  yang  yang  sangat  dikenal  sebagai  makanan penutup di Jepang. Substansi gelatin ini secara kimiawi identik dengan selulosa (Yoshinaga  et al., 1997).  Ananas  comosus  merupakan  substrat  pertama  yang  digunakan  untuk  pembentukan  nata,  namun karena sifatnya yang musiman  maka dicarikan beberapa alternatif lain untuk  memproduksi  nata  yang  bisa  tersedia  dengan  mudah  sepanjang  tahun  dan  murah  harganya.  Ditinjau  dari  komposisinya nanas terdiri atas sebagian besar air yang di dalamnya banyak mengandung gula dan  vitamin serta mineral penting (Muljohardjo, 1984). Kandungan kalori dari nanas per 100 gram bahan  dapat dimakan terdiri atas : air 80‐85%, gula 12‐15 %, asam 0,6%, protein 0,4%, abu 0,5% dan lemak  0,1% (Samson, 1986). Selain karbohidrat, di dalam buah nanas juga terdapat lemak, nitrogen, asam‐ asam organik, pigmen, vitamin serta bahan‐bahan organik. Asam organik utama yang terkandung di  dalam nanas adalah asam sitrat, yang merupakan asan‐asam non volatil yang terbanyak dalam buah  nanas (Jacobs, 1985).  Air  kelapa  mempunyai  potensi  yang  baik  untuk  di  buat  minuman  fermentasi  karena  kandungan zat gizinya yang kaya dan relatif lengkap, sehingga sesuai untuk pertumbuhan mikroba.  Komposisi  gizi  air  kelapa  tergantung  pada  umur  kelapa  dan  variertasnya.  Air  kelapa  per  100  ml  mengandung sejumlah zat gizi, yaitu protein 0,2 g, lemak 0,2 g, gula 3,8 g, vitamin C 1,0 mg, asam  amino,  dan  hormon  pertumbuhan.  Jenis  gula  yang  terkandung  glukosa,  fruktosa,  sukrosa,  dan  sorbitol (Astawan, 2004).  Acetobbakter  xylinum  merupakan  bakteri  asam  asetat  yang  bersifat  gram  negatif,  aerob,  berbentuk  batang,  nonmotil,  suhu  optimum  pertumbuhannya  25‐30  0C,  dan  mampu  mengoksidasi  etanol menjadi asam aetat pada pH 4,5 (Madigan et al., 1997). Proses pembuatan nata oleh bakteri  A. xylinum merupakan kegiatan sintesa selulosa yang dikatalis oleh enzim pensintesis selulosa yang  terikat  pada  membran  sel  bakteri.  Penguraian/fermentasi  gula  dilakukan  melalui  jalur  heksosa  monofosfat dan siklus asam sitrat (Susilawati dan Mubarik,  2002). Siklus asam sitrat seperti tersaji  pada Gambar 1.  Selulosa  bakterial  merupakan  salah  satu  produk  fermentasi  yang  menggunakan  mikroorganisme  seperti  A.  xylinum,  A.  pasteurianus  estunensis,  Sacsina  ventriculi,  dan  Valonia 

1

macrophysa.  Produk  alami  ini  bebas  lignin,  kristalinitasnya  tinggi  (>60%),  dan  merupakan  selulosa  dengan bobot molekul tinggi dengan modifikasi kristalin (Engelhardt, 1995).  Acetobacter  merupakan  bakteri  yang  menghasilkan  serat‐serat  selulosa  yang  sangat  halus.  Serat‐serat  ini  dapat  membentuk  suatu  jaringan  pada  lapisan  permukaan  antara  udara  dan  cairan  yang  disebut  pelikel.  Pelikel  ini  memiliki  ketebalan  kira‐kira  10  mm  bergantung  pada  masa  pertumbuhan  mikroba.  Pelikel  yang  berada  pada  permukaan  udara  cairan  ini  terdiri  atas  pita‐pita  yang  mengandung  kristalin  yang  tinggi.  Pita–pita  tersebut  memiliki  lebar  40‐100  nm,  namun  panjangnya sulit diukur karena membentuk jaringan yang berkaitan satu dengan yang lainnya. Pita  tersebut tersusun atas bagian mikrofibril yang berhubungan melalui ikatan hidrogen (Figini, 1982).   

Cellulose 

UDP‐Glc 

GLC

UGP 

GHK 

G1P 

PGM 

G6PD (NAD) 

G6P  G6PD (NAD) 

PGI 

FRC 

FHK 

PGA  Phentose Phosphate  pathway 

F6P FBP 

PTS 

TCA cyle  EMP

F1P

FDP 1PFK 

  Gambar  1.  Lintasan  biosintesis  selulosa  pada  Acetobacter  xylinum.  Glc=glukosa;  G6P=glukosa‐6‐ fosfat;  G1P=glukosa‐1‐fosfat;  PGA=asam  fosfoglukonat;  Frc=fruktosa;  FDP=  fruktosa1,6‐ difosfat;  F6P=fruktosa‐6‐fosfat;  GHK=glukosa  heksokinase;  PGM=fosfoglukomutase;  UDP=glukosa  pirofosforilase;  G6PD=glukosa‐6‐fosfat  dehidrogenase;  PG1=fosfoglukosa  isomerase;  FHK=fruktosa  heksokinase;  PTS+fosfotransferase  sistem;  EMP=Embden  Meyerhoff pathway (Yoshinaga et a.l 1997)    Menurut  Meshitsuka  dan  Isogai  (1996),  bahan  yang  mengandung  selulosa  biasanya  membentuk  struktur  kristalin,  sehingga  air  tidak  dapat  masuk  kedaerah  aktif  kristalin  pada  suhu  kamar.  

2

Selulosa  bakterial  memiliki  karakteristik  yang  berbeda  pada  struktur  kristalinnya.  Selulosa  tersebut mengandung dua struktur  kristalin yang berbeda, yaitu selulosa 1α dan selulosa 1ß. Pada  selulosa 1α, satu unit sel triklinat mengandung satu rantai selulosa, sedangkan pada selulosa 1ß satu  unit  sel  monoklinat  mengandung  dua  rantai  selulosa.  Selulosa  bakterial  mengandung  selulosa  1α  kira‐kira 60%, hal ini berbeda dengan selulosa yang berasal dari tumbuhan (misalnya rami dan kapas)  yang  mengandung  selulosa  1α  hanya  30%,  sedangkan  sisanya  adala  selulosa  1ß  (Yoshinaga  et  al.  1997).    BAHAN DAN CARA KERJA   

Pada  praktikum  kali  ini  bahan  yang  digunakan  adalah  bibit  dalam  pembuatan  Nata  yang 

berisi bakteri Acetobacter xylinum yang kemudian diinokulasi ke dalam berbagai media dalam wadah  gelas  plastik  dengan  beberapa  perlakuan,  yaitu  kelompok  1  dan  2  menggunakan  10  ml  inokulum  bibit  pembuatan  Nata  ke  dalam  media  yang  mengandung  0.3%  urea  dan  0.3%  ZA  dengan  yang  diinkubasi secara statis yaitu dengan mendiamkannya, kelompok 3 dan 4 juga menggunakan 10 ml  inokulum  bibit  pembuatan  Nata  ke  dalam  media  yang  juga  mengandung  0.3  %  ZA  dan  0.3%  urea  tetapi  di  inkubasi  dalam  mesin  penggoyang  dan  kelompok  5  dengan  menggunakan  5  ml  inokulum  bibit  pembuatan  Nata  ke  dalam  media  yang  mengandung  0.3%  ZA,  0.3%  urea  dan  kombinasi  dari  urea  dan  ZA  yang  diinkubasi  secara  statis.  Kontrol  media  adalah  media  yang  berisi  dari  beberapa  media  yang  mengandung  diantaranya  0.3%  urea,  0.3%  ZA  dan  kombinasi  urea  dan  ZA  tanpa  diberikan bibit pembuatan Nata.   

Bibit  atau  starter  yang  digunakan  adalah  Acetobacter  yang  telah  ditumbuhkan  pada  media 

yang sama yang digunakan dalam praktikum kali ini.   

Media  yang  digunakan  sebagai  media  pembuatan  Nata  terdiri  dari  beberapa  unsur  selain  

perlakuan, seperti gula pasir sebagai sumber karbon, air kelapa sebagai sumber vitamin  dan unsur  mikro  dan  asam  asetat  glasial  sebagai  penyesuai  pH  dimana  dalam  pembuatan  Nata  diperoleh  kondisi optimumnya adalah pada pH asam.   

 

   

3

HASIL DAN PEMBAHASAN    HASIL  Dilakukan pengamatan selama 14 hari dimana pada hari ke‐7, pada semua  perlakuan belum  terdapat  lapisan  nata.  Sedangkan  setelah  pengamatan  yang  dilakukan  pada  hari  ke‐14,  pada  beberapa perlakuan telah terbentuk nata yang hasilnya dapat dilihat pada tabel 1.  Tabel  1. Hasil Pengamatan hari ke 14 pembentukan Nata de Coco pada beberapa perlakuan   Perlakuan agitasi 

Volume  inokulum 

Bentuk Nata 

Tebal Nata  (cm) 

Berat Nata  (g) 

ZA  0,3% 

Tidak digoyang 

10 ml 

Lapisan dipermukaan 

1.5 

49.5 

Urea 0,3 % 

Tidak digoyang 

10 ml 

Lapisan dipermukaan 

1.0 

20.0 

Kontrol ZA 

Tidak digoyang 

‐ 

‐ 





ZA  0,3% 

Tidak digoyang 

10 ml 

Lapisan dipermukaan 

1.2 

51.0 

Urea 0,3 % 

Tidak digoyang 

10 ml 

Lapisan dipermukaan 

0.9 

23.5 

Kontrol Urea 

Tidak digoyang 

‐ 

‐ 





ZA  0,3% 

digoyang 

10 ml 

Granul kecil melayang 





Urea 0,3 % 

digoyang 

10 ml 

Granul kecil melayang 





Kontrol ZA 

digoyang 

‐ 

‐ 





ZA  0,3% 

digoyang 

10 ml 

Granul kecil melayang 





Urea 0,3 % 

digoyang 

10 ml 

Granul kecil melayang 





Kontrol Urea 

digoyang 

‐ 

‐ 





ZA  0,3% 

Tidak digoyang 

5 ml 

Lapisan dipermukaan 

1.5 

73.0 

 

Urea 0,3 % 

Tidak digoyang 

5 ml 

Lapisan dipermukaan 

1.2 

24.5 

 

ZA + Urea  Kontrol ZA   0,3%  Kontrol Urea  0,3 %  Kontrol ZA +  Urea 

Tidak digoyang 

5 ml 

Lapisan dipermukaan 

1.8 

35.5 

Tidak digoyang 

‐ 

‐ 





Tidak digoyang 

‐ 

‐ 





Tidak digoyang 

‐ 

‐ 





Kel.  1 









      

Perlakuan  Sumber N 

  PEMBAHASAN  Urea  adalah  suatu  senyawa  organik  yang  terdiri  dari  unsur  karbon,  hidrogen,  oksigen  dan  nitrogen  dengan  rumus  (NH2)2CO.  Urea  juga  dikenal  dengan  nama  carbamide  yang  terutama  digunakan di kawasan Eropa. Sebagai pupuk, urea digunakan sebagai sumber nitrogen demikian juga  ZA.  Pupuk  ZA  adalah  pupuk  kimia  buatan  yang  dirancang  untuk  memberi  tambahan  nitrogen  dan  belerang. Nama ZA adalah singkatan dari istilah bahasa Belanda, zwavelzure ammoniak, yang berarti  amonium  sulfat  (NH4SO4).  Kedua  jenis  pupuk  ini  diberikan  sebagai  sumber  nitrogen  dalam  proses  pembuatan Nata. 

4

Dari  hasil  pengamatan  pada  proses  pembuatan  Nata  dengan  mengamati  pengaruh  dari  penggunaan  sumber  N  yang  berbeda  diketahui  bahwa  penggunaan  pupuk  ZA  lebih  baik  dalam  produksi  pembuatan  Nata  dimana  pupuk  ZA  menghasilkan  Nata  kurang  lebih  50  gram  pada  media  yang  sama,  lebih  banyak  apabila  dibandingkan  dengan  pemberian  pupuk  urea  yang  hanya  mampu  memproduksi  Nata  sebesar  kurang  lebih  20  gram.  Apabila  kedua  pupuk  tersebut  dikombinasikan  hasilnya  tidak  lebih  baik  daripada  hanya  dilakukan  pemberian  ZA  tetapi  lebih  baik  daripada  hanya  pemberian  pupuk  urea  saja.  Pada  pemberian  pupuk  ZA  (ammonium  sulfat),  Nata  yang  diproduksi  lebih banyak mungkin disebabkan oleh pemecahan molekul ammonium sulfat yang lebih sederhana  dibandingkan  urea.  Selain  itu,  bentuk  ion  ammonium  lebih  membutuhkan  sedikit  energi  dibandingkan nitrogen yang masih berbentuk senyawa amida.  Selain itu, dari pengamatan juga diperoleh bahwa pemberian jumlah inokulum yang berbeda  juga dapat memberikan pengaruh terhadap produksi Nata. Pemberian inokulum sebanyak 5 ml pada  tiap  media  menghasilkan  berat  Nata  yaitu,  dengan  pupuk  ZA  diperoleh  73  gram,  pupuk  urea  24.5  gram dan kombinasi pupuk urea dan pupuk ZA diperoleh berat 35.5 gram dimana hasil ini lebih baik  apabila dibandingkan dengan pemberian inokulum sebesar 10 ml yang hanya mampu menghasilkan  Nata  dengan  berat  50  gram  untuk  media  dengan  pupuk  ZA  dan  20  gram  untuk  media  yang  diberi  pupuk urea. Hal ini mungkin dikarenakan lebih banyak glukosa yang dibentuk menjadi selulosa pada  pemberian  inokulum  yang  lebih  sedikit  karena  glukosa  selain  dipakai  untuk  memproduksi  selulosa  juga digunakan sebagai sumber makanan bagi sel bakteri. 

  Gambar 2.  Foto hasil pengamatan produksi Nata pada hari ke 14. Kiri atas: adalah foto kontrol, kiri   bawah: foto pembentukan Nata pada media statis dan foto kanan: Nata yang diperoleh.    Pada  perlakuan  lainnya  yaitu  pengaruh  tempat  inkubasi  dimana  dalam  praktikum  kali  ini  adalah untuk membedakan antara media yang diinkubasi secara statis atau didiamkan dengan yang  diinkubasi  pada  tempat  dengan  penggoyang  atau  digoyang,  diperoleh  hasil  bahwa  Nata  yang  diproduksi pada media yang diinkubasi dengan didiamkan lebih baik daripada media yang diinkubasi 

5

dengan digoyang. Media yang diinkubasi dengan cara didiamkan menghasilkan lapisan putih diatas  permukaan media dengan ketebalan hingga 1.5 cm sedangkan untuk media yang diinkubasi dengan  digoyang  terbentuk  granul‐granul  kecil  berwarna  putih.  Lapisan  atau  granul  tersebut  adalah  gambaran  dari  pembentukan  selulosa,  akan  tetapi  pada  inkubasi  dengan  penggoyangan,  selulosa  gagal  membentuk  serat  dan  lapisan  dipermukaan  diakibatkan  karena    kecilnya  kristalin  yang  terbentuk  akibat  terpencar  oleh  penggoyangan.  Kristalin‐kristalin  yang  seharusnya  berkumpul  menjadi  serat‐serat  atau  jaringan  terpecah  akibat  penggoyangan  yang  kemudian  kristalin‐kristalin  tersebut  terisolasi  akibat  sel‐sel  bakteri  kemudian  mengelilingi  kristalin‐kristalin  tersebut  (Czaja,  2004).    KESIMPULAN  1. Dalam  pembuatan  Nata,  pemberian  pupuk  ZAlebih  baik  daripada  pemberian  pupuk  urea  ataupun kombinasi dari keduanya.  2. Jumlah  inokulan  yang  diberikan  berpengaruh  pada  proses  pembuatan  Nata  seperti  pada  praktikum kali ini, berat produksi Nata pada pemberian inokulum bibit Aceobacter sebanyak  5 ml lebih besar dari pada pemberian bibit sebanyak 10 ml.  3. Temapat inkubasi memberikan pengaruh terhadap produksi Nata dimana jumlah Nata yang  diproduksi  lebih  baik  dan  lebih  banyak  ketika  pada  proses  pembuatan  Nata,  wadah  media  dalam keadaan statis daripada digoyang.    REFERENSI    Yoshinaga F, Tonouchi N, Watanabe K. 1997. Research Progress in Production of Bacterial Cellulose  by  Aeration  and  Agitation  Culture  and  Its  Application  as  a  New  Industrial  Material.  Biosci.  Biotech. Biochem., 61:219‐224.  Muljohardjo  M.  1984.  Nanas  dan  Teknologi  Pengolahannya:  Ananas  comosus  (L)  Merr.  Liberty.  Yogyakarta.  Samson JA. 1986. Tropical Fruits. Second Edition. Longman Scientific & Technical. England.  Jacobs  MB.  1985.  The  Chemical  Analysis  of  Food  and  Food  Product.  Van  Nostrand  Company.  Inc.  Princenton, New York.  Astawan M. 20 Feb 2004. Nata De Coco yang Kaya Serat. Kompas: 10 (klm 7‐8)  Madigan MT, Martinko JM, Parker J, 1997. Brock Biology of Microorganism. Edisi ke‐8, New Jersey:  Prentince Hall.  Susilawati  L,  Mubarik  NR.  2002.  Pembuatan  Nata  de  Coco  dan  Nata  de  Radia.  Laboratorium  mikrobiologi, Jurusan Biologi FMIPA IPB, Bogor. 

6

Engelhardt J. 1995. Sourche, Industrial Derivatives and Commercial Application of Cellulose. Journal  Carbohydrate in Europe. 12:5‐13.  Figini M. 1982. Cellulose and Other Nature Polymer System. Plenum, New York.  Meshitsuka G, Isogai A. 1996. Chemical Structures of Cellulose, Hemicellulose, and Lignin. di dalam.  Chemical  Modification  of  Lignocellulosic  Materials.  Hon,  D.N.S.  (Ed.).  Marcel  Dekker,  New  York.  Czaja,  W.,  Romanovicz,  D.  and  Brown  R.M.  2004.   Structural  Investigations  of  Microbial  Cellulose  Produced  in  Stationary  and  Agitated  Culture.    Journal  Cellulose,  Springer  in  Netherlands.  Volume 11, p: 403‐411       

7